| 常用在线层析柱 |
| SuperdexTM S200 HR 10/30 |
凝胶过滤/分子排阻 |
| Mono QTM HR 5/5 |
阴离子交换 |
| Mono STM HR 5/5 |
阳离子交换 |
| RESOURCETM HIC Eth |
疏水层析 (弱) |
| RESOURCE HIC Iso |
疏水层析 (中) |
| RESOURCE HIC Phe |
疏水层析 (强) |
| XK 16/20柱 |
专用于用特殊介质填充 |
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这些装配使系统可以提供16种可选择的缓冲液，7种层析柱，280或254 nm紫外吸收，电导，温度，压力和pH在线监测。使用UNICORNTM 软件控制系统和获得数据。
这种配置不仅适合探索和筛选不同实验条件，而且允许众多用户长期在线拥有他们的缓冲液和层析柱。
主要使用者应用的技术和层析实例在表1和所引用的图中概述。
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结 论
在IGM安装了ÄKTAFPLC，现在大部分纯化科研项目已经使用该系统取得了极大的成功。ÄKTAFPLC运行操作简单，快速并重复性极高。我们获得ÄKTAFPLC之后，那些以前害怕纯化工作的许多同事，现在也更享受做纯化工作了。
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| 图2. T.maratima 拓扑异构酶I (topoisomerase I)
能用肝素柱或蔗糖梯度部分纯化，然而会被核酸酶影响。杂质能用uperdexTM 200 HR10/30柱除去。所用样品和峰2
(在级份14中收集) 见电泳图。污染核酸酶活性出现在峰9中。数据来自M.Duguet教授。 |
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| 图3. 一步纯化ATP结合盒[ATP Binding Cassette (ABC)]。ATP酶N-端有多聚组氨酸。柱：XK
16/20填充螯合Ni2+的Chelating Sepharose凝胶。电泳图说明分部收集的所有洗脱峰的ATP酶的纯度水平。缓冲液A：50
mM磷酸钠，10 mM咪唑，1 mM EDTA；缓冲液B：咪唑浓度为1 M的缓冲液A。蓝线=mAU扫描；红线=注射开始和结束；橙线=%缓冲液B。 |
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| 图4. 经过硫酸铵沉淀和透析的鸡卵黄IgY的最后纯化。残留污染的磷脂在用IgY 做蛋白质印迹之前应除去。缓冲液A：50
mMTris-HCl,120 mM NaCl (pH 7.5); 缓冲液B：50 mM Tris-HwCl,
1M NaCl (pH 7.5)。蓝线=mAU 扫描；红线=电导；橙线=%缓冲液B。 |
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