综述:光激活/调控CRISPR系统:从体外诊断到体内基因操纵
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时间:2025年09月29日
来源:TrAC Trends in Analytical Chemistry 11.8
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本综述系统阐述了光控CRISPR技术如何通过光笼基团(photocage groups)实现核酸与蛋白的精准调控,突破传统CRISPR在体外诊断中与等温扩增技术(如SHERLOCK、DETECTR)存在的靶标竞争、底物争夺(Mg2+/dNTPs)等瓶颈,并在体内基因编辑(如Cas9、Cas12、Cas13)中实现高时空精度的非侵入性操控,为癌症治疗及疾病模型构建提供新策略。
光调控CRISPR技术的核心在于通过光笼基团对生物分子关键位点进行暂时性修饰。理想状态下,被修饰的分子在"笼化"期间保持失活,仅在特定波长光照下发生解笼(decaging)后方恢复活性。目前广泛应用于CRISPR系统光调控的光敏基团主要包括邻硝基苄基(o-nitrobenzyl)、香豆素(coumarin)及呫吨(xanthene)等衍生物,它们具有光解效率高、生物相容性好等特性。调控策略涵盖两类:一是对核酸元件(如gRNA或扩增模板)进行光控修饰,二是直接对Cas蛋白活性中心进行光敏化改造。
光激活CRISPR技术有效解决了等温扩增(如RPA、LAMP)与CRISPR系统在"一锅法"检测中的固有矛盾。传统方法中,Cas蛋白-gRNA复合物与DNA聚合酶竞争同一核酸靶标,导致扩增效率下降(因模板降解或空间位阻)及反应组分(如Mg2+、dNTPs)的争夺。通过光控策略,可先进行等温扩增阶段(CRISPR系统处于惰性状态),待扩增完成后通过光照激活Cas蛋白(如Cas12a、Cas13a)的反式切割活性(trans-cleavage),实现对低丰度靶标(如病原体核酸、癌症标志物)的高灵敏度检测,显著提升信噪比与特异性。
光调控为CRISPR体内应用提供了前所未有的时空精度。在基因编辑领域,通过光控Cas9蛋白的核定位信号(NLS)或催化活性中心,可实现特定组织(如肿瘤部位)或发育特定时期的基因组定点切割,减少脱靶效应。在转录调控方面,光敏化dCas9与效应因子(如激活因子VP64、抑制因子KRAB)的融合蛋白可通过光照精确控制基因表达水平,用于构建疾病模型或研究信号通路动态。此外,在癌症治疗中,光激活CRISPR系统可与光动力疗法(PDT)或光热治疗(PTT)联用,通过局部光照触发肿瘤相关基因的编辑或调控,增强治疗特异性并降低系统性毒性。
尽管光控CRISPR技术已取得显著进展,仍面临多重挑战:其一,需优化光敏基团的解笼效率与生物安全性;其二,需突破技术兼容性瓶颈(如不同波长光源的穿透深度限制);其三,需开发多路复用调控系统以实现并行基因操作。未来,通过跨学科合作(如材料科学、光学工程),光控CRISPR技术有望在精准医疗、合成生物学及基础研究中发挥更大价值。
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