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G蛋白信号调节因子2通过抑制S1P2/S1P3受体信号通路抑制结肠癌细胞迁移的分子机制
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年08月09日 来源:Journal of Biological Chemistry 3.9
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本研究揭示了RGS2(G蛋白信号调节因子2)作为S1P2/S1P3受体信号通路的负调控因子,通过特异性结合受体并抑制Gαi/q/12介导的下游信号,显著降低结肠癌细胞迁移和癌症相关基因表达。研究人员采用BRET(生物发光共振能量转移)和共定位技术证实了三元复合物的形成,为靶向S1P受体-RGS2互作治疗结肠癌提供了新策略。
鞘氨醇-1-磷酸(S1P)作为重要的脂质信号分子,通过其受体S1P1-5调控多种生理病理过程。其中S1P2和S1P3在结肠癌中异常高表达,与肿瘤迁移和耐药性密切相关,但其精确调控机制尚未阐明。更关键的是,G蛋白信号调节因子(RGS)家族如何参与这一过程仍是未解之谜。这一科学问题的破解,将为结肠癌治疗提供新的分子靶点。
京畿大学生命科学系(Department of Life Science, Kyonggi University)的Jaejun Eo、Nahyun Kim和Sungho Ghil团队在《Journal of Biological Chemistry》发表的研究,首次揭示了RGS2通过独特的三元复合物机制抑制S1P2/S1P3信号通路的分子细节。研究人员采用BRET技术实时监测活细胞内蛋白互作,结合共免疫沉淀验证特异性结合;通过钙流检测、RhoA活性分析和CAMYEL报告系统全面评估Gα信号抑制;运用伤口愈合实验和transwell迁移模型解析功能表型;最后通过qPCR阵列筛选癌症相关基因表达谱。
Specific interaction of RGS2 with S1P2 and S1P3 in live cells
BRET分析显示RGS2与S1P2/S1P3存在特异性结合,净BRET值随受体表达量增加而升高,而对照蛋白RGS1无此现象。突变体实验证实该互作不依赖Gα亚基参与,受体激动剂处理也不改变结合强度。
Subcellular localization of RGS2 and S1P2 and S1P3
共聚焦显微镜显示RGS2在受体共表达时从胞质转位至细胞膜,Pearson相关系数显著高于RGS1对照组,证实空间共定位。
Interaction of S1P2 and S1P3 with Gα and RGS2 in HCT116 cells
在结肠癌细胞中验证三元复合物形成,Gαi/q/12均参与互作但不竞争结合位点,提示RGS2可能通过稳定受体-Gα复合体抑制信号传导。
Specific Inhibition of S1P2- and S1P3-Mediated Gα Signaling by RGS2
功能实验显示RGS2显著抑制S1P受体激活引起的cAMP降低(Gαi)、钙动员(Gαq)和RhoA激活(Gα12),而RGS1无此效应。
Inhibitory effects of RGS2 on S1P2- and S1P3-mediated cell migration
伤口愈合和transwell实验证实RGS2可抑制80%以上的受体介导的迁移能力,Western blot显示其通过阻断ERK/AKT磷酸化实现这一调控。
Suppression of S1P2- and S1P3-induced cancer-related gene expression
qPCR分析发现RGS2下调ATF3、SNAIL等促癌基因表达,这些基因均与EMT(上皮-间质转化)和转移密切相关。
该研究首次阐明RGS2通过形成"受体-RGS2-Gα"三元复合物的独特机制,实现对S1P2/S1P3信号的多层次抑制。这不仅解释了RGS2在结肠癌中表达下调的病理意义,更为重要的是,揭示了通过恢复RGS2功能来阻断S1P受体促癌信号的治疗潜力。从转化医学角度看,针对该互作界面的小分子开发,可能成为克服当前S1P靶向疗法耐药性的新途径。研究还创新性地将BRET技术应用于GPCR-RGS互作研究,为相关领域提供了方法学范式。
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