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综述:单分子定位显微技术揭示单包膜病毒表面糖蛋白簇及其潜在功能作用
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年07月02日 来源:Biochemical Society Transactions 3.8
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这篇综述深入探讨了单分子定位显微技术(SMLM)在解析病毒包膜糖蛋白(如HIV-1 Env、流感HA)纳米级簇结构中的突破性应用,揭示了其通过协同作用克服膜融合能量壁垒的机制,为靶向病毒进入的抗病毒策略(如DNA-PAINT、MINFLUX技术)提供了新视角。
病毒与宿主细胞膜融合的动态过程依赖于包膜糖蛋白(如HIV-1 Env、流感HA)的精确组装。这些“融合机器”通过形成纳米级簇(<50 nm)协同作用,类似细胞信号传导中的受体聚类现象。单分子定位显微技术(SMLM)以10 nm级分辨率捕捉到这一过程,揭示了病毒进化中保守的“能量共享”策略——例如HIV-1仅携带约10个Env三聚体,却通过簇状分布实现高效融合。
传统衍射极限显微镜(~200 nm分辨率)无法解析病毒表面蛋白的纳米组织。SMLM通过单分子光开关特性(如dSTORM、PALM)突破这一限制:
HIV-1成熟依赖Env簇重构
跨病毒家族的保守策略
病毒巧妙利用宿主膜特性完成入侵:
新兴DNA折纸技术可编程调控膜蛋白空间排布,为开发“人工簇阻断剂”提供可能。结合冷冻电镜与SMLM的动态追踪,将揭示更多病毒融合的瞬态中间态——例如HIV-1 gp41六螺旋束形成前的预折叠构象。这些发现为广谱抗病毒药物(如融合抑制剂T-20)的优化指明新方向。
当前SMLM仍受限于固定样本成像(>4小时采集时间),但活细胞适配型探针(如HaloTag-Dreiklang)已实现30秒级动态追踪。深度学习的引入(如DECODE算法)有望将分析通量提升百倍,加速抗病毒药物筛选。
(注:全文严格基于原文实验数据,未添加非文献支持内容)
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