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综述:人类肠道微生物组体外培养技术的进展及其全面分析
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年05月22日 来源:Biotechnology Advances 12.1
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这篇综述系统探讨了体外(in vitro)发酵模型在人类肠道微生物组研究中的突破性应用,提出通过三维支架(3D scaffolds)、定制培养基、仿生发酵系统及先进分析技术(如NGS)模拟肠道微环境,克服了临床(in vivo)和动物模型的伦理与技术瓶颈,为揭示微生物-宿主互作机制提供了可控、高效的研究平台。
人类肠道微生物组与健康和疾病的关联日益明确,但临床研究和动物模型存在变量控制难、伦理限制等问题。体外发酵模型通过模拟肠道结构(如3D支架)和功能(如厌氧环境、37°C培养),结合高通量测序(NGS)和光谱技术,成为研究微生物行为的新范式。
肠道微生物组包含原核和真核微生物,与慢性炎症、代谢综合征、神经退行性疾病及癌症密切相关。传统临床研究依赖粪便样本,难以实时监测结肠动态;动物模型则因物种差异无法精准模拟人体环境。体外模型通过可控的培养基(含碳源、氮源、维生素)和仿生发酵系统(模拟结肠蠕动、pH、氧梯度),实现了微生物群落的动态培养。
传统培养皿无法复现肠道复杂空间结构。3D支架(如胶原或合成聚合物)提供机械支撑和营养通道,促进微生物定植与互作,其孔隙率与表面化学性质直接影响菌群组成。
定制培养基需满足严格厌氧条件和37°C恒温,添加氨基酸、嘌呤等关键因子以支持难培养菌(如Faecalibacterium prausnitzii)。培养基优化是还原肠道功能的核心。
体外系统可模拟结肠分段(升结肠-降结肠)的生理差异,通过连续流动反应器控制滞留时间与代谢物梯度,研究膳食纤维降解或药物代谢等过程。
从Leeuwenhoek的显微镜到现代质谱(MS)和宏基因组学,技术进步使单细胞分辨率分析成为可能。拉曼光谱(Raman spectroscopy)可实现无标记活菌代谢监测。
未来需整合器官芯片(organ-on-chip)与多组学(multi-omics)技术,提升模型的生理相关性,为个性化医疗和益生菌开发提供平台。
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