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本文聚焦肠道相关淋巴组织(GALTs)中的树突状细胞(DCs)。研究发现调节性树突状细胞(DCregs)可促进调节性 T 细胞(Tregs)增殖,Fms 样酪氨酸激酶 3 配体(FLT3L)通过 Notch 通路增强这一过程。该研究为溃疡性结肠炎(UC)治疗提供新思路,值得关注。
### 引言
树突状细胞(DCs)作为肠道相关淋巴组织(GALTs)中的关键抗原呈递细胞,其增殖和分化受 Fms 样酪氨酸激酶 3 配体(FLT3L)及其受体 FLT3 的调控。GALTs 中的 DCs 可分化为不同亚群,其中调节性树突状细胞(DCregs)能促进免疫耐受,在溃疡性结肠炎(UC)中发挥保护作用。此前研究发现,UC 小鼠结肠组织中 FLT3L 表达、CD103? DCs 和 Tregs 数量减少,FLT3L 治疗可缓解炎症并增加相关细胞数量。但 FLT3/FLT3L 通路对 Tregs 扩增的影响机制尚不清楚,且 DCregs 促进 Tregs 增殖的具体机制也有待明确。同时,Jagged1(JAG1)/Notch 信号通路在调节 Tregs 扩增和免疫耐受中起关键作用,FLT3/FLT3L 还可能通过激活 Rac1 影响细胞迁移,本研究旨在探究 DCreg 诱导 Treg 扩增的机制以及 FLT3L 在此过程中的作用。
方法
- 实验动物:选用 6 - 8 周龄、体重 25g 的无特定病原体(SPF)雄性 BALB/c 小鼠,饲养于大连医科大学动物研究实验室,实验遵循相关动物实验规范并获批准。
- 建立小鼠结肠炎模型:将小鼠分为对照组、DSS 诱导的结肠炎模型组(DSS 组)、DSS 诱导的结肠炎 + DCregs 腹腔注射组(DSS + DCreg 组)、DSS 诱导的结肠炎 + DCregs 和 FLT3L 腹腔注射组(DSS + DCreg + FLT3L 组)。除对照组外,其他组小鼠饮用含 5% DSS 的水 7 天诱导急性 UC,同时分别腹腔注射 DCregs、DCregs 联合 FLT3L 或磷酸盐缓冲液(PBS),记录疾病活动指数(DAI),实验结束后处死小鼠进行相关检测。
- 结肠炎的宏观和组织学评估:解剖小鼠结肠,根据结肠宏观损伤指数(CMDI)评估肠道黏膜损伤程度;对结肠组织进行固定、切片和苏木精 - 伊红(HE)染色,进行组织病理学评分。
- RNA 提取和定量实时聚合酶链反应(RT - qPCR):从 DCregs 和 Foxp3? Tregs 中提取总 RNA,逆转录为互补 DNA(cDNA)后进行 RT - qPCR 分析,检测 JAG1、Notch1 等基因的相对表达量。
- 蛋白质提取和蛋白质免疫印迹(Western blotting)分析:裂解细胞提取蛋白质,进行定量后经十二烷基硫酸钠 - 聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS - PAGE)分离,转膜后用相关抗体进行检测,用 Image J 软件分析条带强度。
- 从 GALTs 中分离和纯化 DCs:分别制备肠系膜淋巴结(MLNs)、派尔集合淋巴结(PPs)和结肠固有层(LP)的淋巴细胞单细胞悬液,通过磁珠分选和流式细胞术(FC)进一步分离 CD11c?细胞及不同 DC 亚群。
- 分离脾细胞中的 CD4? T 细胞和 CD4?CD25? T 细胞:取小鼠脾脏制备单细胞悬液,经离心分层获取淋巴细胞,再利用相关试剂盒和仪器分离 CD4? T 细胞和 CD4?CD25? T 细胞。
- T 细胞抑制试验和混合淋巴细胞反应(MLR):制备同种异体 BALB/c 脾细胞的 CD4? T 细胞,与不同亚群的 DCs 共培养 96h,用 MTT 法检测 CD4? T 细胞的增殖活性。
- 细胞培养和迁移分析:将 DCregs 与前体 T 细胞共培养,检测不同条件下 CD25?Foxp3? T 细胞和 CD4? T 细胞的比例;通过直接接触和间接接触共培养 DCregs 与 CD4?CD25? T 细胞,分析相关指标;利用 Transwell 小室进行细胞迁移实验,检测 DCregs 的迁移能力。
- FC 分析:使用荧光标记的抗体对细胞进行染色,通过 FC 检测细胞表面和细胞内分子的表达。
- 统计分析:使用 GraphPad Prism 8.0 软件进行统计分析,数据以均值 ± 标准误表示,采用 t 检验或单因素方差分析(ANOVA)进行组间比较,P < 0.05 为差异有统计学意义。
结果
- 从 GALTs 中分离和鉴定 DCregs:成功从小鼠 GALTs 中分离出 4 种 DC 亚群,MLR 实验显示 CD103?CD11b? DCs 免疫抑制能力最强,将其确定为 DCreg 亚群进一步研究。
- FLT3L 和 DCregs 在前体 T 细胞分化为 Foxp3 表达的 Tregs 中的作用:DCregs 与 CD4?CD25? T 细胞共培养可增加 CD25?Foxp3? T 细胞的比例,添加 FLT3L 后该比例进一步升高。
- FLT3/FLT3L 通路和 Rho 信号通路在 DCregs 迁移中的作用:FLT3L 可增强 DCregs 的迁移能力,Rac 抑制剂 NSC - 23766 能抑制其迁移,且在 DCregs 与 CD4?CD25? T 细胞共培养实验中,NSC - 23766 可降低 CD25?Foxp3? T 细胞的比例。
- Notch 信号通路在 Treg 扩增中的作用:使用 γ - 分泌酶抑制剂 DAPT 抑制 Notch 通路后,DCregs/CD4? T 细胞共培养体系中 CD25?Foxp3? T 细胞的比例显著降低。
- FLT3/FLT3L 通路通过直接接触促进 DCregs 诱导 Treg 扩增的作用:在 DCregs 与 CD4?CD25? T 细胞直接接触的共培养体系中,FLT3L 可促进 Treg 扩增,沉默 FLT3 或添加 DAPT 会抑制这一过程,同时 FLT3L 可上调 JAG1 和 Notch1 的表达,二者表达与 Tregs 扩增相关。
- DAI 评分分析:DSS 组 DAI 评分显著高于对照组,DSS + DCreg + FLT3L 组和 DSS + DCreg 组的 DAI 评分从实验第 3 天和第 4 天起显著低于 DSS 组,且 DSS + DCreg + FLT3L 组在实验后期 DAI 评分低于 DSS + DCreg 组。
- CMDI、组织病理学评分和结肠中 FLT3 的表达:DSS + DCreg 组和 DSS + DCreg + FLT3L 组的 CMDI 评分和组织病理学评分均低于 DSS 组,DSS 组结肠组织中 FLT3 表达降低,DSS + DCreg + FLT3L 组 FLT3 表达显著上调。
- FC 分析 DCreg 和 Foxp3?Treg 的比例:DSS 组结肠 LP 和 MLN 中 DCregs 的比例显著降低,CD4? T 细胞比例升高;DSS + DCreg 组和 DSS + DCreg + FLT3L 组 DCregs 比例增加,CD4? T 细胞比例降低,且 Foxp3? Tregs 比例随着 DCregs 比例增加而升高。
讨论
DCs 在免疫反应和胃肠道免疫平衡中起重要作用,UC 患者结肠组织和淋巴结中 CD103? DCs 减少。本研究从 GALTs 中分离出多种 DC 亚群,确定 CD103?CD11b? DCs 为 DCregs,其在体内可缓解结肠炎并促进 Foxp3? Tregs 扩增,维持肠道免疫耐受。
FLT3L 对 DCreg 的增殖至关重要,在 DSS 诱导的结肠炎小鼠中,补充 FLT3L 可增加 DCregs 数量。FLT3/FLT3L 不仅影响 DC 发育,还对 DCregs 促进 Foxp3? Tregs 扩增的功能有重要作用,缺乏 FLT3L 或沉默 FLT3 会抑制 Tregs 扩增。
Rac 在 DC 迁移中不可或缺,FLT3/FLT3L 可通过 Rho 信号通路增强 DCregs 的迁移能力,Rac 抑制剂 NSC - 23766 抑制 DCregs 迁移,进而间接抑制 Treg 扩增。
Notch 信号通路影响 Treg 分化和免疫耐受,本研究发现抑制该通路会削弱 DCregs 扩增 Tregs 的能力,FLT3/FLT3L 通路可能通过 Rho 通路增强 DCreg 向 Tregs 的迁移,并上调 JAG1 表达,从而通过 Notch 通路促进 Tregs 扩增。
本研究揭示了 FLT3/FLT3L 通路在 DCregs 诱导 Tregs 扩增中的重要作用,但存在一定局限性,如仅使用 BALB/c 小鼠模型,后续需进一步验证。不过,这些发现仍为 UC 的治疗提供了新的潜在方向 。