Atovaquone 新发现:抑制 PERK/eIF2α 信号轴可增强头颈癌代谢放射增敏

《Cell Communication and Signaling》:Atovaquone-induced activation of the PERK/eIF2α signaling axis mitigates metabolic radiosensitisation

【字体: 时间:2025年04月03日 来源:Cell Communication and Signaling 8.2

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  为解决头颈部鳞状细胞癌(HNSCC)因缺氧导致放疗抵抗的问题,研究人员开展了关于 Atovaquone 对 HNSCC 细胞在常氧和缺氧条件下辐射响应影响的研究。结果发现 Atovaquone 激活 PERK/eIF2α 信号轴,抑制该轴可恢复其放射增敏作用,为解决缺氧相关治疗抵抗提供新策略。

  在癌症治疗的战场上,放疗是对抗头颈部鳞状细胞癌(Head and Neck Squamous Cell Carcinoma,HNSCC)的重要武器,但缺氧这个 “敌人” 却让放疗效果大打折扣。HNSCC 是全球第六大致命癌症,每年新增近 90 万病例,导致 45 万人死亡 ,发病率还在持续上升。对于局部晚期 HNSCC,放疗是标准治疗手段,可肿瘤内的缺氧区域却会通过改变微环境和基因组,促使癌细胞产生辐射抗性,严重影响治疗效果。
此前,人们尝试过多种方法来解决这个问题,比如增加内源性氧水平、使用缺氧激活前药等,但这些方法在临床试验中都未能让患者获益。后来,有研究提出抑制氧化磷酸化(Oxidative Phosphorylation,OXPHOS)来抑制癌细胞的氧消耗,从而提高放疗效果,也就是 “代谢放射增敏”。Atovaquone 作为一种 FDA 批准的抗寄生虫药物,能抑制线粒体电子传递链(Mitochondrial Electron Transport Chain,ETC)功能,减少肿瘤缺氧,在临床前研究中展现出了一定的抗癌潜力。可奇怪的是,它在不同肿瘤模型中的放射增敏效果并不稳定。为了弄清楚背后的原因,来自英国女王大学贝尔法斯特分校(Queen’s University Belfast)的研究人员展开了深入研究,相关成果发表在《Cell Communication and Signaling》杂志上。

研究人员主要运用了以下几种关键技术方法:利用 Seahorse XFe96 分析仪和 XF 细胞线粒体应激测试评估细胞的生物能量学反应;通过克隆形成实验检测 Atovaquone 对辐射剂量的修饰作用;采用流式细胞术分析活性氧(Reactive Oxygen Species,ROS)产量;运用蛋白质免疫印迹(Western blotting)和定量逆转录聚合酶链反应(Quantitative Reverse Transcription PCR)研究相关信号通路的激活情况;还利用 RNA 干扰(RNA interference,RNAi)和药物抑制的方法探究关键蛋白在调节放射敏感性中的作用。

下面来看看具体的研究结果:

  • Atovaquone 对细胞呼吸的影响:研究发现,Atovaquone 显著抑制了所有 HNSCC 细胞系的线粒体呼吸,无论是在缺氧还是常氧条件下,都降低了基础呼吸、最大呼吸和 ATP 生成。同时,缺氧时 Atovaquone 会使细胞的糖酵解依赖性显著增加。这表明 Atovaquone 会破坏细胞的能量代谢平衡,迫使细胞从依赖有氧呼吸转向糖酵解来获取能量。
  • Atovaquone 的放射增敏作用:克隆形成实验表明,Atovaquone 在常氧条件下能显著增加 FaDu 细胞的放射敏感性,在缺氧条件下也能发挥一定的放射增敏作用,但对 CAL27 和 CAL33 细胞的放射敏感性没有明显影响,这说明 Atovaquone 的放射增敏效果存在细胞系特异性。
  • Atovaquone 对 ROS 生成的影响:研究显示,Atovaquone 联合放疗可显著增加 FaDu、CAL27 和 CAL33 细胞在常氧条件下的线粒体 ROS 生成,但在缺氧条件下,这种促进作用会减弱。这意味着缺氧环境会影响 Atovaquone 诱导 ROS 生成的能力,而 ROS 生成与放射敏感性密切相关。
  • Atovaquone 对 ISR 信号通路的激活:研究人员发现,Atovaquone 会激活整合应激反应(Integrated Stress Response,ISR)信号通路,使真核翻译起始因子 2α(eukaryotic translation initiation factor 2α,eIF2α)磷酸化水平增加。在常氧和缺氧条件下,Atovaquone 都能促进 PERK 的磷酸化,进而导致 eIF2α 磷酸化,且这种作用在不同细胞系中均有体现。这表明 Atovaquone 激活 ISR 信号通路是一个普遍现象,可能对细胞的应激反应和放射敏感性产生重要影响。
  • Atovaquone 对细胞周期的影响:Atovaquone 会诱导 HNSCC 细胞发生期阻滞。在常氧和缺氧条件下,Atovaquone 都能使 FaDu 细胞的期比例增加,同时降低 S 期细胞比例,在 CAL27 细胞中也观察到了类似的趋势。这种细胞周期的改变与 ISR 激活有关,且期细胞对放疗相对抗性较强,可能会影响放射治疗效果。
  • Atovaquone 对缺氧相关基因表达的影响:缺氧会诱导 HIF-1α 表达,而 Atovaquone 能有效抑制 HIF-1α 水平,且这种抑制作用在很大程度上依赖于 eIF2α。研究人员通过使用 ISR 抑制剂 ISRIB 发现,抑制 eIF2α 磷酸化可恢复 HIF-1α 的稳定,同时也会影响 HIF-1α 下游靶基因的表达。这说明 Atovaquone 通过激活 ISR 信号通路,影响了缺氧相关基因的表达,进而影响肿瘤细胞对缺氧的适应性和放射敏感性。
  • Atovaquone 对自噬和凋亡的影响:在缺氧条件下,Atovaquone 会诱导 CAL27 细胞的自噬,表现为 LC3-I 向 LC3-II 的转化增加。而抑制自噬,如使用 3 - 甲基腺嘌呤(3-MA),可增强细胞凋亡和放射敏感性。这表明 Atovaquone 诱导的自噬在 CAL27 细胞中起到了促进细胞存活的作用,抑制自噬可以增强 Atovaquone 的放射增敏效果。
  • 抑制 ISR 对放射敏感性的影响:通过 siRNA 敲低 eIF2α 或使用 ISRIB 抑制 eIF2α,研究人员发现这可以显著增强 Atovaquone 的放射增敏作用。在缺氧条件下,eIF2α 抑制联合 Atovaquone 能显著提高 FaDu 和 CAL27 细胞的放射敏感性,同时增加线粒体 ROS 水平,促进细胞周期重新分布,减少期细胞比例。这充分证明了抑制 ISR 信号通路可以有效增强 Atovaquone 的放射增敏作用。

综合上述研究结果,研究人员得出结论:Atovaquone 虽然可以通过抑制 OXPHOS 来发挥缺氧放射增敏作用,但同时也会激活 ISR 信号通路,引发一系列保护机制,导致肿瘤细胞对放疗产生抗性。然而,如果抑制 ISR 信号通路,比如抑制 eIF2α 或抑制自噬,就能恢复 Atovaquone 的代谢放射增敏特性,增加 ROS 产量,减少期阻滞,从而提高放疗效果。

这项研究意义重大,它揭示了 Atovaquone 在肿瘤治疗中复杂的作用机制,为克服缺氧诱导的放疗抵抗提供了新的策略和潜在靶点。未来,有望通过进一步研究,开发出针对 PERK/eIF2α 信号轴的靶向药物,与 Atovaquone 或放疗联合使用,提高头颈部鳞状细胞癌的治疗效果,为癌症患者带来新的希望。不过,目前的研究主要是在体外细胞实验中进行的,未来还需要在动物模型和临床试验中进一步验证这些发现,评估 Atovaquone 与相关抑制剂联合治疗的安全性和有效性,为临床应用提供更坚实的理论基础和实践依据。

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