《Proceedings of the National Academy of Sciences》:Structure of ATP synthase from an early photosynthetic bacterium Chloroflexus aurantiacus
编辑推荐:
本文聚焦 F 型 ATP 合酶(F1 FO ),通过解析橙色绿屈挠菌(Chloroflexus aurantiacus )的 F1 FO (Ca F1 FO )结构,发现其独特的双外周柄和双 a 亚基结构,为理解 ATP 合酶质子转运机制及功能调控提供了新视角,值得一读。
### 研究背景
F 型 ATP 合酶(F
1 F
O )在氧化磷酸化和光磷酸化的最终步骤中,催化由质子动力势(PMF)驱动的 ATP 合成,广泛存在于线粒体(mtF
1 F
O )、叶绿体(cF
1 F
O )和细菌(bF
1 F
O )中。它由可溶的 F
1 部分和膜嵌入的 F
O 部分组成,F
1 负责合成 ATP,F
O 负责质子跨膜转运。在 ATP 合成过程中,PMF 驱动 F
O 中 c 环旋转,通过中央轴传递,引起 F
1 中 α
3 β
3 的构象变化,从而实现 ATP 的合成 ,形成一个高效的分子涡轮,利用旋转催化进行能量转换。
光合生物或细胞器中的 F1 FO 合酶,为适应光波动和光依赖的生物能量需求带来的快速 PMF 变化,对 c 亚基和 γ 亚基进行了修饰 。例如,植物和蓝藻的 F1 FO 合酶 c 环化学计量数较大,在 13 - 15 之间,产生较高的 H+ 与 ATP 的比率(H+ -to-ATP ratio),这有利于维持 PMF 在一个既能支持 ATP 合成又能最小化光损伤的范围内。此外,cF1 FO 可通过 γ 亚基中一个约 40 个氨基酸插入形成的二硫键的氧化还原调节来调控自身活性,而蓝藻的 F1 FO 虽在 γ 亚基有插入,但缺乏这种氧化还原调节,这表明光合 F1 FO 合酶存在多样化的调控机制。由于 F1 FO 合酶在光驱动 ATP 生产中的核心作用,它成为调节光合作用、光转换效率的有吸引力的靶点,在工程植物、合成细胞器或光驱动仿生系统中具有重要应用潜力。
虽然菠菜 cF1 FO 的完整结构已被高分辨率解析,为理解高等植物光合 F1 FO 的结构和机制细节提供了重要信息,但目前尚无光合细菌完整 F1 FO 的高分辨率结构。橙色绿屈挠菌(Chloroflexus aurantiacus )是丝状无氧光合细菌,属于光合生物最早分支的绿屈挠菌门,其通过独特的光依赖电子传递链进行无氧光合作用,最终将电子和质子释放到周质中,产生 ATP 合成所需的 PMF。因此,解析橙色绿屈挠菌的 F1 FO (Ca F1 FO )结构,有助于深入了解早期光合生物中 F1 FO 的结构和催化机制。
实验方法
Ca F1 FO 的分离与纯化 :培养橙色绿屈挠菌 J - 10 - fl 细胞,经离心、匀浆、多次超速离心获取细胞膜。用n - 十二烷基 -β - D - 麦芽糖吡喃糖苷(DDM)溶解细胞膜,再通过阴离子交换色谱和尺寸排阻色谱进行纯化,得到用于后续实验的Ca F1 FO 。
冷冻电镜样品制备与数据收集 :测定纯化的Ca F1 FO 蛋白浓度后,将其滴加到特制的网格上,经过 blotting、冷冻处理。对于 ADP 结合构象的样品,需先将纯化的Ca F1 FO 与 MgCl2 和 ADP 孵育。使用 300 - kV Titan Krios 显微镜结合相关设备和软件收集冷冻电镜图像。
图像处理 :运用 CryoSPARC v3.3.2 软件对冷冻电镜图像进行运动校正和对比度传递函数(CTF)估计。对 ADP 自由和 ADP 结合的Ca F1 FO 数据集分别进行粒子选择、提取、二维(2D)分类和三维(3D)分类。通过多次迭代的异源精修和非均匀精修,基于金标准傅里叶壳层相关(FSC)截止值 0.143,获得不同旋转状态下的高分辨率三维图,并对 FO 区域和外周柄区域进行聚焦精修,提高局部分辨率。
模型构建与精修 :以芽孢杆菌 PS3 的 F1 FO (PDB ID: 6N2Y)为参考,在 UCSF Chimera 软件中拟合构建 ADP 自由的Ca F1 FO 初始模型,然后在 Coot 软件中手动构建原子模型并调整,最后在 PHENIX 软件中进行实空间精修。以 ADP 自由的Ca F1 FO 精修模型为参考,在 Coot 软件中手动构建 ADP 结合的Ca F1 FO 结构,并在 PHENIX 软件中进行精修。
Ca F1 FO 重组到蛋白脂质体中 :将纯化的Ca F1 FO 与磷脂酰胆碱按一定比例混合,添加 Triton X - 100 促进插入,再用 Bio - Beads SM - 2 去除 Triton X - 100,得到重组的Ca F1 FO 蛋白脂质体,用于 ATP 合成和水解活性测定。
ATP 合成活性测定 :利用荧光素酶 - 荧光素系统,通过监测反应产生的荧光强度,根据标准曲线计算 ATP 的生成量,以此测定重组Ca F1 FO 蛋白脂质体的 ATP 合成活性。
ATP 水解活性测定 :将Ca F1 FO 催化的 ADP 水解反应与丙酮酸激酶(PK)和乳酸脱氢酶(LDH)偶联,通过监测 NADH 在 340 nm 处的吸光度变化,测定Ca F1 FO 的 ATP 水解活性。
实验结果
Ca F1 FO 的整体结构 :从橙色绿屈挠菌中成功分离出具有功能活性的Ca F1 FO ,其在蓝色非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)中呈现单一条带,在 tricine - 十二烷基硫酸钠(SDS) - PAGE 中显示八条带。通过肽质量指纹图谱(PMF)鉴定出八个亚基(αβγεδabc),由基因簇(Caur _3040 - 3047)编码。重组到蛋白脂质体中的Ca F1 FO 在 ATP 合成方面具有完全活性,但在 ATP 水解方面存在自抑制现象。
通过单颗粒冷冻电镜分析,获得了Ca F1 FO 三个不同旋转状态(命名为旋转状态 1、2 和 3)的三维图,分辨率分别为 2.84 ?、2.89 ? 和 3.31 ? 。聚焦精修后,FO 区域和两个外周柄区域的局部分辨率得到进一步提高。在 ADP 自由的结构中,三个 β 亚基均未观察到核苷酸密度,而三个 α 亚基均结合有 ATP 分子;在与 Mg - ADP 孵育后,成功获得了 ADP 结合的 β 亚基结构,分辨率分别为 2.89 ?、2.96 ? 和 3.18 ?,聚焦精修后各区域分辨率再次提升。这些高分辨率的冷冻电镜图使得能够构建精确的原子模型,包括 α、β、γ、ε、a、b、c 亚基以及 δ 亚基的 C 末端结构域(δ - C),其中 δ 亚基的 N 末端结构域(δ - N)在旋转状态 1 中被解析,在状态 2 和 3 中分辨率较低未建模。
Ca F1 FO 的结构与以往报道的 ATP 合酶 / ATP 酶不同,它由Ca F1 头部(α3 β3 )、膜嵌入的Ca FO (a2 c10 )通过两个外周柄(δ2 b4 )和一个中央柄(γε)连接而成,亚基化学计量数为 α3 β3 γεδ2 a2 b4 c10 。两个 δ 亚基的同型二聚体在Ca F1 头部的两个位置(相隔约 135°)连接 b1 - 和 b3 - 亚基与 α3 β3 六聚体,外周柄的卷曲螺旋 b1b2 和 b3b4 分别分叉并锚定一个 a 亚基,形成酶的定子,中央柄(γε)插入Ca F1 头部并连接到 c10 环作为转子。 2. 柄的构象可塑性 :Ca F1 FO 的三个旋转状态通过中央柄和 c10 环约 120°、125° 和 114° 的旋转来区分。中央柄的旋转诱导Ca F1 头部的顺序构象变化,并使其相对于Ca FO 对称轴倾斜,即 “进动” 过程。三个旋转状态下,Ca F1 和Ca FO 对称轴之间的进动角分别为 2.2°、0.3° 和 0.8°,c 亚基位置在旋转状态 2 相对于状态 1 和 3 偏移约 9.3°。中央柄在三个旋转状态下的均方根偏差(RMSD)值表明,γ 和 ε 亚基具有结构刚性,这与 bF1 FO 和 cF1 FO 相似,但与具有两个外周柄的Tt V1 VO 和 mtF1 FO 不同,后两者在 c 环旋转时中央柄存在较大灵活性。
Ca F1 FO 含有连接两个外周柄到Ca F1 头部的 δ 亚基二聚体,每个 δ 亚基由两个通过柔性铰链连接的结构域组成。δ - N 结构域由四个 α 螺旋组成,与以往报道的 δ - N 结构无结构相似性,两个 δ - N 结构域在 δH1 和 δH3 螺旋处互锁形成二聚体,位于Ca F1 头部中央。在三个旋转状态转换过程中,δ - N 二聚体的位置分别移动约 16 ?、2 ? 和 14 ?,表明其有助于协调Ca F1 进动过程中的构象变化。δ - C 结构域含有四链 β - 折叠和两个 α 螺旋,通过广泛的氢键与 α 亚基的 N 末端 β - 桶相互作用,并容纳 b1 - 和 b3 - 亚基的弯曲 C 末端。在三个旋转状态转换时,α - Ns 向不同方向扭转,但始终与两个 δ - C 保持接触,其中只有 δ2 - C 构象变化最小。在外周柄的中间卷曲螺旋区域,b1b2 - 亚基弯曲成不同曲率,b3b4 - 亚基通过盐桥与 α 亚基紧密接触。在三个旋转状态下,外周柄锚定 a 亚基的膜区域无构象变化。这些结果表明,两个外周柄在三个旋转状态转换过程中,在顶部 δ 亚基二聚体和中间卷曲螺旋区域具有构象可塑性,为Ca F1 进动与Ca FO 中 c10 环旋转的耦合提供了结构稳定性和构象灵活性。 3. Mg - ADP 诱导的Ca F1 构象变化和 ε 抑制 :Ca F1 由三个围绕中央柄的构象不同的 αβ 异源二聚体组成,每个 α 和 β 亚基包含 N 末端 β - 桶结构域、中央核苷酸结合结构域和 C 末端螺旋结构域,α 亚基比 β 亚基多一个 N 末端螺旋(N - helix),部分 N - helix 与 b3b4 - 亚基通过疏水相互作用结合,防止外周柄随机移动。在 ADP 自由和 ADP 结合的结构中,三个 α 亚基均结合 Mg - ATP 且构象相同,ADP 自由结构中三个催化 β 亚基无核苷酸,ADP 结合结构中三个 β 亚基分别呈现 “开放”(βE ,空)、“关闭”(βTP ,Mg - ADP 结合)和 “开放”(βDP ,Mg - ADP 和 Pi 结合)的构象,与报道的 F1 FO 合酶类似,且Ca F1 FO 的核苷酸结合位点在从细菌到真核生物的 F1 FO 合酶中高度保守。
ADP 结合后,Ca F1 FO 的整体构象变化不明显,但 βE 、βDP 和 αDP 的 C 末端螺旋结构域(H12 - 18),尤其是 βDP 和 βE 的 H15 螺旋向核苷酸结合口袋靠近,表明这些区域参与核苷酸结合的协调。在 ADP 结合结构中,βDP 和 βTP 的 H15 螺旋靠近核苷酸结合口袋,支持 ADP 结合诱导 α3 β3 构象变化从而影响 ATP 合成的观点,其中催化 β 亚基的 H15 螺旋变化尤为明显。
Ca F1 FO 的 ADP 自由和 ADP 结合形式均含有延伸的 ε 亚基 C 末端螺旋(εCTD),其插入 αDP 和 βDP 界面并延伸至中央转子腔,与 αDP 和 βDP 形成广泛的疏水相互作用,迫使 βDP 采取开放构象。εCTD 的插入物理性地阻止了 γ 亚基顺时针旋转(即 ATP 水解方向),但允许其逆时针旋转进行 ATP 合成。这与Ca F1 FO 的酶活性分析结果一致,即<
闂備胶鎳撻悘姘跺箲娴h櫣鐭堥柨鐕傛嫹
濠电偞鍨堕幐鎼侇敄閸緷褰掑炊閳规儳浜鹃柣鐔煎亰濡插湱鈧鎸哥€涒晝鈧潧銈搁弫鍌炴倷椤掍焦鐦庨梺璇插缁嬫帡宕濋幒妤€绀夐柣鏃傚帶杩濇繝鐢靛Т濞茬娀宕戦幘鎰佹僵鐎规洖娲ㄩ悾铏圭磽閸屾瑧顦︽俊顐g矒瀹曟洟顢旈崨顖f祫闂佹寧绻傞悧鎾澄熺€n喗鐓欐繛鑼额嚙楠炴﹢鏌曢崶銊ュ摵鐎殿噮鍓熼獮宥夘敊閻e本娈搁梻浣藉亹閻℃棃宕归搹顐f珷闁秆勵殕椤ュ牓鏌涢幘鑼槮濞寸媭鍨堕弻鏇㈠幢濡ゅ﹤鍓遍柣銏╁灡婢瑰棗危閹版澘顫呴柣娆屽亾婵炲眰鍊曢湁闁挎繂妫欑粈瀣煃瑜滈崜姘┍閾忚宕查柛鎰ㄦ櫇椤╃兘鏌ㄥ┑鍡欏ⅵ婵☆垰顑夐弻娑㈠箳閹寸儐妫¢梺璇叉唉婵倗绮氶柆宥呯妞ゆ挾濮烽鎺楁⒑鐠団€虫灁闁告柨楠搁埢鎾诲箣閿旇棄娈ュ銈嗙墬缁矂鍩涢弽顓熺厱婵炲棙鍔曢悘鈺傤殽閻愬弶鍠橀柟顖氱Ч瀵噣宕掑Δ浣规珒
10x Genomics闂備礁鎼崐鐟邦熆濮椻偓楠炴牠鈥斿〒濯爄um HD 闁诲孩顔栭崰鎺楀磻閹剧粯鐓曟慨妯煎帶閻忕姷鈧娲滈崰鎾舵閹烘骞㈡慨姗嗗墮婵啴姊洪崨濠傜瑨婵☆偅绮嶉妵鏃堝箹娴g懓浠㈤梺鎼炲劗閺呮粓鎮鹃柆宥嗙厱闊洤顑呮慨鈧┑鐐存綑濡粓濡甸幇鏉垮嵆闁绘ḿ鏁搁悡浣虹磽娴e憡婀版俊鐐舵铻為柛褎顨呯粈鍡涙煕閳╁啞缂氶柍褜鍏涚划娆撳极瀹ュ鏅搁柨鐕傛嫹
婵犵數鍋涘Λ搴ㄥ垂閼测晜宕查悗锝庡亞閳绘棃鎮楅敐搴″箺缂佷胶娅墂ist闂備線娼уΛ妤呮晝閿濆洨绠斿鑸靛姇濡ɑ銇勯幘璺轰粶缂傚秳绶氶弻娑㈠冀閵娧冣拡濠电偛鐗婇崢顥窱SPR缂傚倷鐒︾粙鎺楁儎椤栫偛鐒垫い鎺嗗亾妞わ缚鍗抽幃褔宕妷銈嗗媰闂侀€炲苯澧村┑鈥愁嚟閳ь剨缍嗛崜姘跺汲閳哄懏鍊垫繛鎴炵懃婵啴鏌涢弮鎾村
闂備礁鎲¢〃鍡椕哄⿰鍛灊闊洦绋掗崵鍕煟閹邦剦鍤熼柕鍫熸尦楠炴牠寮堕幋鐘殿唶闂佸憡鐟ュΛ婵嗩潖婵犳艾惟闁靛绲煎ù鐑芥煟閻樿京鍔嶇憸鏉垮暣閹儵鏁撻敓锟� - 婵犵數鍎戠徊钘夌暦椤掑嫬鐭楅柛鈩冡缚椤╂煡鏌涢埄鍐惧毀闁圭儤鎸鹃々鐑藉箹鏉堝墽绉甸柛搴㈠灥閳藉骞橀姘濠电偞鍨堕幖鈺傜濠婂啰鏆﹂柣鏃囨绾惧ジ鏌涢埄鍐闁告梹甯¢幃妤呭捶椤撶偘妲愰梺缁樼⊕閻熝囧箯鐎n喖绠查柟浼存涧閹線姊洪崨濠傜濠⒀勵殜瀵娊鎮㈤悡搴n唹濡炪倖鏌ㄩ悘婵堢玻濞戙垺鐓欓悹銊ヮ槸閸婂鎮烽姀銈嗙厱婵炲棙锚閻忋儲銇勯銏╁剶鐎规洜濞€瀵粙顢栭锝呮诞鐎殿喗鎮傞弫鎾绘晸閿燂拷
濠电偞鍨堕幐鎼侇敄閸緷褰掑炊椤掆偓杩濇繝鐢靛Т鐎氼噣鎯屾惔銊︾厾鐎规洖娲ゆ禒婊堟煕閻愬瓨灏﹂柟钘夊€婚埀顒婄秵閸撴岸顢旈妶澶嬪仯闁规壋鏅涙俊铏圭磼閵娧冾暭闁瑰嘲鎳庨オ浼村礃閵娧€鍋撴繝姘厸閻庯綆鍋勬慨鍫ユ煛瀹€鈧崰搴ㄥ煝閺冨牆鍗抽柣妯挎珪濮e嫰鏌f惔銏⑩姇闁告梹甯″畷婵嬫偄閻撳宫銉╂煥閻曞倹瀚�