从早期光合细菌橙色绿屈挠菌中解析 F1FO型 ATP 合酶结构:开启质子转运机制新认知

《Proceedings of the National Academy of Sciences》:Structure of ATP synthase from an early photosynthetic bacterium Chloroflexus aurantiacus

【字体: 时间:2025年03月26日 来源:Proceedings of the National Academy of Sciences 9.4

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  本文聚焦 F 型 ATP 合酶(F1FO),通过解析橙色绿屈挠菌(Chloroflexus aurantiacus)的 F1FOCaF1FO)结构,发现其独特的双外周柄和双 a 亚基结构,为理解 ATP 合酶质子转运机制及功能调控提供了新视角,值得一读。

  ### 研究背景
F 型 ATP 合酶(F1FO)在氧化磷酸化和光磷酸化的最终步骤中,催化由质子动力势(PMF)驱动的 ATP 合成,广泛存在于线粒体(mtF1FO)、叶绿体(cF1FO)和细菌(bF1FO)中。它由可溶的 F1部分和膜嵌入的 FO部分组成,F1负责合成 ATP,FO负责质子跨膜转运。在 ATP 合成过程中,PMF 驱动 FO中 c 环旋转,通过中央轴传递,引起 F1中 α3β3的构象变化,从而实现 ATP 的合成 ,形成一个高效的分子涡轮,利用旋转催化进行能量转换。
光合生物或细胞器中的 F1FO合酶,为适应光波动和光依赖的生物能量需求带来的快速 PMF 变化,对 c 亚基和 γ 亚基进行了修饰 。例如,植物和蓝藻的 F1FO合酶 c 环化学计量数较大,在 13 - 15 之间,产生较高的 H+与 ATP 的比率(H+-to-ATP ratio),这有利于维持 PMF 在一个既能支持 ATP 合成又能最小化光损伤的范围内。此外,cF1FO可通过 γ 亚基中一个约 40 个氨基酸插入形成的二硫键的氧化还原调节来调控自身活性,而蓝藻的 F1FO虽在 γ 亚基有插入,但缺乏这种氧化还原调节,这表明光合 F1FO合酶存在多样化的调控机制。由于 F1FO合酶在光驱动 ATP 生产中的核心作用,它成为调节光合作用、光转换效率的有吸引力的靶点,在工程植物、合成细胞器或光驱动仿生系统中具有重要应用潜力。

虽然菠菜 cF1FO的完整结构已被高分辨率解析,为理解高等植物光合 F1FO的结构和机制细节提供了重要信息,但目前尚无光合细菌完整 F1FO的高分辨率结构。橙色绿屈挠菌(Chloroflexus aurantiacus)是丝状无氧光合细菌,属于光合生物最早分支的绿屈挠菌门,其通过独特的光依赖电子传递链进行无氧光合作用,最终将电子和质子释放到周质中,产生 ATP 合成所需的 PMF。因此,解析橙色绿屈挠菌的 F1FOCaF1FO)结构,有助于深入了解早期光合生物中 F1FO的结构和催化机制。

实验方法


  1. CaF1FO的分离与纯化:培养橙色绿屈挠菌 J - 10 - fl 细胞,经离心、匀浆、多次超速离心获取细胞膜。用n- 十二烷基 -β - D - 麦芽糖吡喃糖苷(DDM)溶解细胞膜,再通过阴离子交换色谱和尺寸排阻色谱进行纯化,得到用于后续实验的CaF1FO
  2. 冷冻电镜样品制备与数据收集:测定纯化的CaF1FO蛋白浓度后,将其滴加到特制的网格上,经过 blotting、冷冻处理。对于 ADP 结合构象的样品,需先将纯化的CaF1FO与 MgCl2和 ADP 孵育。使用 300 - kV Titan Krios 显微镜结合相关设备和软件收集冷冻电镜图像。
  3. 图像处理:运用 CryoSPARC v3.3.2 软件对冷冻电镜图像进行运动校正和对比度传递函数(CTF)估计。对 ADP 自由和 ADP 结合的CaF1FO数据集分别进行粒子选择、提取、二维(2D)分类和三维(3D)分类。通过多次迭代的异源精修和非均匀精修,基于金标准傅里叶壳层相关(FSC)截止值 0.143,获得不同旋转状态下的高分辨率三维图,并对 FO区域和外周柄区域进行聚焦精修,提高局部分辨率。
  4. 模型构建与精修:以芽孢杆菌 PS3 的 F1FO(PDB ID: 6N2Y)为参考,在 UCSF Chimera 软件中拟合构建 ADP 自由的CaF1FO初始模型,然后在 Coot 软件中手动构建原子模型并调整,最后在 PHENIX 软件中进行实空间精修。以 ADP 自由的CaF1FO精修模型为参考,在 Coot 软件中手动构建 ADP 结合的CaF1FO结构,并在 PHENIX 软件中进行精修。
  5. CaF1FO重组到蛋白脂质体中:将纯化的CaF1FO与磷脂酰胆碱按一定比例混合,添加 Triton X - 100 促进插入,再用 Bio - Beads SM - 2 去除 Triton X - 100,得到重组的CaF1FO蛋白脂质体,用于 ATP 合成和水解活性测定。
  6. ATP 合成活性测定:利用荧光素酶 - 荧光素系统,通过监测反应产生的荧光强度,根据标准曲线计算 ATP 的生成量,以此测定重组CaF1FO蛋白脂质体的 ATP 合成活性。
  7. ATP 水解活性测定:将CaF1FO催化的 ADP 水解反应与丙酮酸激酶(PK)和乳酸脱氢酶(LDH)偶联,通过监测 NADH 在 340 nm 处的吸光度变化,测定CaF1FO的 ATP 水解活性。

实验结果


  1. CaF1FO的整体结构:从橙色绿屈挠菌中成功分离出具有功能活性的CaF1FO,其在蓝色非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)中呈现单一条带,在 tricine - 十二烷基硫酸钠(SDS) - PAGE 中显示八条带。通过肽质量指纹图谱(PMF)鉴定出八个亚基(αβγεδabc),由基因簇(Caur_3040 - 3047)编码。重组到蛋白脂质体中的CaF1FO在 ATP 合成方面具有完全活性,但在 ATP 水解方面存在自抑制现象。

通过单颗粒冷冻电镜分析,获得了CaF1FO三个不同旋转状态(命名为旋转状态 1、2 和 3)的三维图,分辨率分别为 2.84 ?、2.89 ? 和 3.31 ? 。聚焦精修后,FO区域和两个外周柄区域的局部分辨率得到进一步提高。在 ADP 自由的结构中,三个 β 亚基均未观察到核苷酸密度,而三个 α 亚基均结合有 ATP 分子;在与 Mg - ADP 孵育后,成功获得了 ADP 结合的 β 亚基结构,分辨率分别为 2.89 ?、2.96 ? 和 3.18 ?,聚焦精修后各区域分辨率再次提升。这些高分辨率的冷冻电镜图使得能够构建精确的原子模型,包括 α、β、γ、ε、a、b、c 亚基以及 δ 亚基的 C 末端结构域(δ - C),其中 δ 亚基的 N 末端结构域(δ - N)在旋转状态 1 中被解析,在状态 2 和 3 中分辨率较低未建模。

CaF1FO的结构与以往报道的 ATP 合酶 / ATP 酶不同,它由CaF1头部(α3β3)、膜嵌入的CaFO(a2c10)通过两个外周柄(δ2b4)和一个中央柄(γε)连接而成,亚基化学计量数为 α3β3γεδ2a2b4c10 。两个 δ 亚基的同型二聚体在CaF1头部的两个位置(相隔约 135°)连接 b1 - 和 b3 - 亚基与 α3β3六聚体,外周柄的卷曲螺旋 b1b2 和 b3b4 分别分叉并锚定一个 a 亚基,形成酶的定子,中央柄(γε)插入CaF1头部并连接到 c10环作为转子。
2. 柄的构象可塑性CaF1FO的三个旋转状态通过中央柄和 c10环约 120°、125° 和 114° 的旋转来区分。中央柄的旋转诱导CaF1头部的顺序构象变化,并使其相对于CaFO对称轴倾斜,即 “进动” 过程。三个旋转状态下,CaF1CaFO对称轴之间的进动角分别为 2.2°、0.3° 和 0.8°,c 亚基位置在旋转状态 2 相对于状态 1 和 3 偏移约 9.3°。中央柄在三个旋转状态下的均方根偏差(RMSD)值表明,γ 和 ε 亚基具有结构刚性,这与 bF1FO和 cF1FO相似,但与具有两个外周柄的TtV1VO和 mtF1FO不同,后两者在 c 环旋转时中央柄存在较大灵活性。

CaF1FO含有连接两个外周柄到CaF1头部的 δ 亚基二聚体,每个 δ 亚基由两个通过柔性铰链连接的结构域组成。δ - N 结构域由四个 α 螺旋组成,与以往报道的 δ - N 结构无结构相似性,两个 δ - N 结构域在 δH1 和 δH3 螺旋处互锁形成二聚体,位于CaF1头部中央。在三个旋转状态转换过程中,δ - N 二聚体的位置分别移动约 16 ?、2 ? 和 14 ?,表明其有助于协调CaF1进动过程中的构象变化。δ - C 结构域含有四链 β - 折叠和两个 α 螺旋,通过广泛的氢键与 α 亚基的 N 末端 β - 桶相互作用,并容纳 b1 - 和 b3 - 亚基的弯曲 C 末端。在三个旋转状态转换时,α - Ns 向不同方向扭转,但始终与两个 δ - C 保持接触,其中只有 δ2 - C 构象变化最小。在外周柄的中间卷曲螺旋区域,b1b2 - 亚基弯曲成不同曲率,b3b4 - 亚基通过盐桥与 α 亚基紧密接触。在三个旋转状态下,外周柄锚定 a 亚基的膜区域无构象变化。这些结果表明,两个外周柄在三个旋转状态转换过程中,在顶部 δ 亚基二聚体和中间卷曲螺旋区域具有构象可塑性,为CaF1进动与CaFO中 c10环旋转的耦合提供了结构稳定性和构象灵活性。
3. Mg - ADP 诱导的CaF1构象变化和 ε 抑制CaF1由三个围绕中央柄的构象不同的 αβ 异源二聚体组成,每个 α 和 β 亚基包含 N 末端 β - 桶结构域、中央核苷酸结合结构域和 C 末端螺旋结构域,α 亚基比 β 亚基多一个 N 末端螺旋(N - helix),部分 N - helix 与 b3b4 - 亚基通过疏水相互作用结合,防止外周柄随机移动。在 ADP 自由和 ADP 结合的结构中,三个 α 亚基均结合 Mg - ATP 且构象相同,ADP 自由结构中三个催化 β 亚基无核苷酸,ADP 结合结构中三个 β 亚基分别呈现 “开放”(βE,空)、“关闭”(βTP,Mg - ADP 结合)和 “开放”(βDP,Mg - ADP 和 Pi 结合)的构象,与报道的 F1FO合酶类似,且CaF1FO的核苷酸结合位点在从细菌到真核生物的 F1FO合酶中高度保守。

ADP 结合后,CaF1FO的整体构象变化不明显,但 βE、βDP和 αDP的 C 末端螺旋结构域(H12 - 18),尤其是 βDP和 βE的 H15 螺旋向核苷酸结合口袋靠近,表明这些区域参与核苷酸结合的协调。在 ADP 结合结构中,βDP和 βTP的 H15 螺旋靠近核苷酸结合口袋,支持 ADP 结合诱导 α3β3构象变化从而影响 ATP 合成的观点,其中催化 β 亚基的 H15 螺旋变化尤为明显。

CaF1FO的 ADP 自由和 ADP 结合形式均含有延伸的 ε 亚基 C 末端螺旋(εCTD),其插入 αDP和 βDP界面并延伸至中央转子腔,与 αDP和 βDP形成广泛的疏水相互作用,迫使 βDP采取开放构象。εCTD 的插入物理性地阻止了 γ 亚基顺时针旋转(即 ATP 水解方向),但允许其逆时针旋转进行 ATP 合成。这与CaF1FO的酶活性分析结果一致,即<

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