基于化学发光检测 dATP 消耗的 Phi29 DNA 聚合酶活性绝对定量新方法:突破传统局限,引领酶活性检测新方向
《Analytica Chimica Acta》:A safety and absolute activity measurement method for Phi29 DNA polymerase based on chemiluminescent detection of dATP consumption
Phi29 DNA 聚合酶(Phi29 DNA polymerase)是分子生物学中的关键酶,在滚环扩增(rolling - circle amplification)、多链置换扩增(multiple strand - displacement amplification)、单分子实时测序(single - molecule real - time sequencing)等重要应用中发挥着基石作用。尽管它应用广泛,但传统检测其活性的方法,像放射性标记和基于荧光的定量技术,存在操作复杂、精度低和安全风险等问题,这在学术和工业环境中都阻碍了标准化的质量控制。
为应对这些局限,研究人员开发了一种基于化学发光的绝对定量方法,该方法能直接测量聚合过程中 dATP 的消耗情况。在 Phi29 DNA 聚合酶沿着双链环状 DNA 模板进行互补聚合时,通过检测 dATP 的消耗(CDC - dATP)来实现。由于引物链的持续延伸伴随着 dATP 的消耗,而在 dATP 存在的情况下,荧光素(Luciferin)会发生氧化反应。荧光素分子内形成过氧桥,氧化过程中释放一分子二氧化碳,能量以荧光形式释放。当萤火虫荧光素酶(Firefly luciferase)和荧光素过量时,特定浓度范围内产生的荧光与 dATP 浓度成正比。利用荧光光谱仪测量荧光素氧化时发出的荧光,就能确定剩余 dATP 的量,进而计算出 DNA 聚合过程中消耗的 dATP 量,以此反映 Phi29 DNA 聚合酶的绝对活性。
该研究还指出,不同样本的碱基组成差异会影响聚合活性测量结果,不同序列的双链 DNA 模板可能形成不同的二级结构。Phi29 DNA 聚合酶在约 30°C 时活性最佳,这个温度无法通过热变性消除结构差异,所以 DNA 模板的选择会影响聚合酶活性测量的准确性。为此,研究人员将 pET - 28a (+) 双链 DNA 标准化作为实验模板,为建立 Phi29 DNA 聚合酶或其他 DNA 聚合酶的活性检测方法提供了基础框架。不同的模板可能会使酶对 dNTP 掺入的最终定量结果有所不同,但研究人员相信该方法具有普遍适用性。
与其他酶活性检测技术相比,CDC - dATP 方法将发光检测与剩余 dATP 相结合,实现了绝对定量,避免了放射性标记的危害。由于发光检测试剂灵敏度高、线性范围广,该方法的线性范围和灵敏度都有所提升,且两步反应无需对产物 DNA 进行纯化,避免了因纯化产率不稳定导致的准确性干扰。这一突破解决了现有 Phi29 DNA 聚合酶活性检测方法存在的问题,为确定 Phi29 DNA 聚合酶的活性提供了有价值的参考,同时对测定其他涉及 dATP 或 ATP 生成与消耗的酶的绝对活性也具有重要的应用价值。
研究使用的材料和试剂包括从 New England Biolabs(NEB)和 GenEasy Biotechnology Co. Ltd. 购买的 Phi29 DNA 聚合酶,从Escherichia coli中利用质粒提取试剂盒提取的 pET - 28a (+) 质粒 DNA,以及从 Takara Biotechnology(Beijing)Co. Ltd. 购买的 dNTP 混合物和 Enhanced ATP Assay Kit。研究还对 Enhanced ATP Assay Kit 针对不同 dNTP 的特异性进行了测试,结果显示 0.7 mM dATP 能产生较高的发光值,而相同浓度的 dGTP、dCTP 和 dTTP 发光响应微弱。
总之,该研究开发出了一种操作简便、准确的 Phi29 DNA 聚合酶活性绝对定量方法,它灵敏度高、稳定性强、选择性好,克服了现有检测方法存在的放射性污染、操作复杂和定量不准确等问题。