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为准确分析金黄色葡萄球菌(S. aureus)光动力灭活(PDI)实验基因表达数据,研究人员评估内参基因,确定了稳定内参基因,为相关研究提供依据。
在医学研究的微观世界里,金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus,简称 S. aureus)可是个 “大麻烦”。它是引发严重医院感染的重要病原菌,不仅能迅速产生耐药性,还会释放多种致病因子,导致各种高死亡率的感染。在实验室中,研究人员常利用光动力灭活(Photodynamic inactivation,PDI)实验来探索新的抗菌疗法,PDI 是通过光敏剂吸收可见光产生活性氧,破坏细菌的核酸、蛋白质和脂质,从而杀死细菌。而在 PDI 实验中,定量实时聚合酶链反应(Quantitative real-time PCR,qPCR)是常用的检测基因表达的技术,但 qPCR 数据需要稳定的内参基因进行标准化处理,才能保证结果准确可靠。然而,目前针对金黄色葡萄球菌在 PDI 实验中的内参基因稳定性研究较少,且不同实验条件下内参基因的稳定性差异很大,这就像在黑暗中摸索,给研究人员带来了极大的困扰。
为了解开这些谜团,斯洛伐克的 Comenius University in Bratislava 的微生物学和病毒学系以及 Slovak Academy of Sciences 的动物学研究所的研究人员展开了深入研究。他们的研究成果发表在《Heliyon》杂志上。
研究人员用到的主要关键技术方法有:首先,培养了标准菌株金黄色葡萄球菌 CCM 3953 和耐甲氧西林菌株 L18,分别制备浮游细胞、24 小时生物被膜以及聚氨酯(PU)纳米材料上的 24 小时生物被膜;接着,对这些样本进行 PDI 处理;之后,提取 RNA 并反转录为互补 DNA(cDNA);最后,进行实时 qPCR 实验,并利用四种算法(geNorm、NormFinder、BestKeeper 和 ΔCq)分析数据 。
研究结果如下:
- 基因扩增效率和 Cq 值:除 rrsC 基因外,大多数测试基因的 PCR 扩增效率在 90 - 110% 的可接受范围内。rrsC 基因的扩增效率为 79.1%,与之前研究有所不同,说明相同引物在不同实验条件下效率可能不同。大多数基因在浮游细胞和生物被膜样本中的 Cq 值相似,约为 20,但在生物被膜 - PU 样本中,Cq 值更高,约为 25。rrsC 基因在所有样本中表达量高,Cq 值低,在浮游细胞和生物被膜样本中约为 12,在生物被膜 - PU 样本中约为 14。
- 基因表达稳定性分析:
- geNorm 分析:rho 和 rpoD 在大多数样本中是最稳定的基因对,在 L18 浮游细胞和 CCM 生物被膜中,femA 和 rpoD、rho 和 glyA 的组合也达到了最稳定的 M 值。
- NormFinder 分析:结果与 geNorm 相似,最稳定的基因大多匹配,但在 CCM 浮游细胞和生物被膜 - PU 样本中,排名有所不同。rrsC 在两种分析中始终是最不稳定的基因。
- BestKeeper 分析:在浮游细胞 CCM 和 L18 样本中,glyA 和 hu 分别是最稳定的基因;在生物被膜 CCM 和 L18 样本中,rpoD 是最稳定的基因。但 BestKeeper 与其他分析方法的基因排名存在差异。
- ΔCq 分析:在浮游细胞样本中,CCM 的 glyA 和 L18 的 rpoD 是最稳定的基因;在生物被膜样本中,CCM 的 rho 和 L18 的 glyA 最稳定;在生物被膜 - PU 样本中,CCM 的 glyA 和 L18 的 femA 最稳定。
- 综合分析:综合所有分析,在浮游细胞中,最稳定的基因是 rho 和 rpoD,或者 rpoD 和 femA;在生物被膜中,是 rho 和 glyA;在 CCM 生物被膜 - PU 样本中,是 rpoD 和 glyA;在 L18 生物被膜 - PU 样本中,是 femA 和 rpoD。rrsC 在所有测试样本中始终是最不稳定的基因。
- 基因表达差异分析:通过 NormFinder 分析发现,浮游细胞 CCM 和 L18 中,glyA 的组内和组间变异最小;生物被膜 CCM 和 L18 中,rho 的变异最小;生物被膜 - PU 样本中,glyA 的变异最小,且 CCM 样本的组内变异比其他样本组大。
研究结论和讨论部分表明,不同实验条件可能需要单独验证候选内参基因,以确保基因表达结果可靠。rho、rpoD 和 glyA 是金黄色葡萄球菌标准菌株和耐甲氧西林菌株在多种涉及 PhB - 耦合 PDI 和特定光活性纳米材料的实验条件下,较为合适的标准化因子。该研究为金黄色葡萄球菌 PDI 实验中的内参基因选择提供了重要参考,有助于更准确地研究基因表达变化,推动抗菌研究领域的发展,为开发新的抗菌疗法奠定了基础。
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