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研究人员针对预剥离 DMEK 移植物评估难题,优化相关技术,提升评估准确性与效率,意义重大。
角膜,作为眼睛的 “窗户”,对于视力起着至关重要的作用。一旦角膜出现问题,如角膜内皮功能失代偿等疾病,角膜移植便成为恢复视力的重要手段。在众多角膜移植技术中,Descemet 膜内皮角膜移植术(DMEK)凭借其视觉恢复效果好、排斥风险低等优势,近年来备受青睐。在美国,2014 - 2022 年期间,DMEK 在角膜移植手术中的占比从 6% 飙升至 32% ;在欧洲,2018 年 DMEK 占角膜移植手术的 29.7% ,德国更是在 2021 年让 DMEK 成为主导的角膜移植术式,占比达 65% 。
为了简化手术流程,降低手术因移植物问题取消的风险,眼库越来越多地制备 DMEK 移植物,其中预剥离 DMEK 移植物的数量也在不断增加。然而,评估预剥离 DMEK 移植物的质量却困难重重。目前,基于 Calcein - AM 的内皮细胞活力检测方法虽常用,但存在诸多问题。一方面,在检测预剥离 DMEK 移植物时,Calcein 染色对比度差,难以准确评估活力;若将移植物从角膜上分离、平铺后再检测,又会额外造成内皮细胞损伤,导致检测结果无法反映移植物的初始状态。另一方面,该检测后的样本因 Calcein - AM 和 Ethidium 的残留荧光,无法进行后续的免疫荧光(IF)检测,这不仅浪费了宝贵的人类角膜组织,也限制了对移植物更深入的研究。
为了解决这些问题,法国 Jean Monnet 大学医学院眼科生物学、工程与成像实验室(BiiO)等机构的研究人员开展了相关研究。他们的研究成果发表在《Scientific Reports》上,为评估预剥离 DMEK 移植物质量提供了新的方向和方法。
研究人员采用了多种技术方法。首先,使用人角膜进行实验,这些角膜来自于年龄为 75±16(62 - 100)岁的捐赠者,死后间隔 11±6(4 - 24)小时,在器官培养系统中保存 19±11(4 - 36)天,因不适合移植被视为生物废弃物。其次,制备预剥离 DMEK 移植物,通过一系列精细操作,如用细齿镊子切除小梁网、用分离器分离 Descemet 膜(DM)与角膜基质等。最后,进行内皮细胞活力检测和免疫荧光检测,并对相关实验条件进行优化。
研究结果如下:
- Calcein - AM 浓度和稀释剂的影响:研究人员测试了不同浓度(2μM 和 4μM)的 Calcein - AM 在不同稀释剂(PBS 和 Opti - MEM)中的染色效果。结果显示,与传统的 2μM Calcein 在 PBS 中相比,4μM Calcein 在 Opti - MEM 中的荧光强度提高了三倍。同时,使用 PBS 作为稀释剂会导致角膜内皮细胞出现裂纹,破坏细胞连接,而 Opti - MEM 则无此现象。
- 台盼蓝(TB)染色的作用:在使用 4μM Calcein - AM in Opti - MEM 染色后,进行 TB 染色。结果发现,TB 染色显著降低了非特异性荧光,增强了 Calcein 染色的对比度。这使得不同操作人员之间的差异显著降低(从 “before TB” 组的 6.1±4.3% 降至 “after TB” 组的 3.5±1.8%),活力计数时间也明显缩短(从 “before TB” 组的 10.3±7.4 分钟降至 “after TB” 组的 5.6±1.7 分钟)。此外,TB 染色还能清晰显示 DM 的边界和附着区域,有助于评估剥离技术和移植物质量,同时在检测中能更好地辅助活细胞 ECD 计数。
- 免疫荧光(IF)检测的优化:传统的 HEC 活力检测后,残留的 Calcein 和 Ethidium 会干扰 IF 检测。研究人员通过使用 Hoechst 和 Calcein - AM(HC)组合染色并省略 Ethidium,以及对固定和通透化后的移植物进行长时间 PBS 洗涤,成功实现了后续的 NCAM 和 ZO - 1 的双 IF 检测。
研究结论和讨论部分表明,该研究的技术优化具有重要意义。一方面,优化后的 Calcein 染色提高了检测的可靠性和速度,有助于更准确地评估移植物质量。另一方面,TB 染色不仅改善了染色效果,还能辅助判断 DM 的状态和附着位置,方便 ECD 计数。此外,优化后的方法还适用于其他类型的角膜移植物,如穿透性角膜移植术(PK)和 Descemet 膜剥离自动化内皮角膜移植术(DSAEK)移植物的评估。这一系列技术优化为眼库和临床医生提供了更有效的工具,有望提高角膜移植手术的成功率,改善患者的视力预后。
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