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可植入双药缓释系统通过STING激动剂与凋亡诱导剂序贯释放实现级联免疫治疗抑制术后肿瘤复发
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年02月15日 来源:Nature Communications
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针对术后肿瘤复发难题,中山大学团队开发了"三明治"结构双药缓释植入系统(MS-DF-MS),通过3D打印支架(含STING激动剂MSA-2)与电纺纤维(载凋亡诱导剂DOX)的序贯释放,首次发现MSA-2可诱导内质网应激介导的免疫原性凋亡,并通过微管解聚延长STING-IFNβ通路激活时间,在小鼠模型中实现持续免疫激活(CD8+ T细胞增加5倍)和90%复发抑制率。该研究为实体瘤术后治疗提供了新型联合免疫治疗方案。
在肿瘤治疗领域,手术切除仍是实体瘤的主要治疗手段,但术后残留癌细胞导致的复发转移始终是临床难题。传统化疗药物如阿霉素(DOX)虽能诱导免疫原性凋亡,但单独使用效果有限;而新型STING激动剂MSA-2虽能激活干扰素基因刺激蛋白(STING)通路,但其作用时间短暂(仅维持24小时)。如何实现长效免疫激活成为突破术后复发瓶颈的关键。
中山大学的研究人员创新性地提出"级联免疫治疗"策略,开发出可植入双药缓释系统(MS-DF-MS)。该系统采用独特的"三明治"结构:外层为3D打印的明胶/海藻酸钠支架负载MSA-2,内层为聚乳酸-羟基乙酸共聚物(PLGA)电纺纤维包裹DOX。通过材料降解动力学差异实现药物序贯释放——MSA-2优先释放激活STING通路,DOX缓释诱导凋亡并增强免疫应答。
研究采用三大关键技术:1)流变学优化的3D打印生物墨水(剪切稀化指数>1);2)静电纺丝制备500nm直径纤维载体;3)多组学分析(RNA测序显示IFNβ上调426个基因)。通过构建小鼠B16F10黑色素瘤术后模型,结合流式细胞术(检测CD80+CD86+ DCs)、免疫荧光(显示CRT膜移位)和ELISA(IFNγ提升5倍)等多维度验证疗效。
表征与药物释放特性
扫描电镜显示支架具有10-60μm多孔结构,纤维平均直径500nm。在pH 6.5条件下,MSA-2的72小时累积释放量达85%,而DOX仅释放45%,证实序贯释放能力。
体外免疫激活机制
突破性发现MSA-2可同时触发两条凋亡通路:通过BAX激活经典凋亡,以及caspase 12(Casp12)介导的内质网应激(ERS)凋亡。Western blot显示MS-DF-MS处理组cleaved Casp12表达量较对照组提高8倍。
自我强化的免疫循环
肿瘤相关抗原(TAAs)和损伤相关分子模式(DAMPs)激活Toll样受体(TLRs),促使核因子κB(NF-κB)依赖的微管解聚,抑制STING向溶酶体转运(共定位系数Rpearson从0.647降至0.289),延长信号通路持续时间。
体内抗肿瘤效果
植入10天后,实验组肿瘤坏死率达66.9%(对照组仅10.7%),Ki67+细胞减少80%。复发抑制效果显著优于游离药物组(P<0.0001),且可诱导免疫记忆——二次攻击时存活率100%。
该研究首次揭示STING激动剂与化疗药物的协同机制:MSA-2启动免疫应答,DOX增强抗原呈递,两者通过NF-κB/微管轴形成正反馈循环。这种"三明治"植入物为临床解决术后复发提供了可局部给药、长效激活的创新方案,尤其适用于乳腺癌、直肠癌等易残留病灶的肿瘤类型。研究提出的"级联免疫治疗"范式,为联合免疫治疗设计提供了新思路。
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