Salidroside 通过调节 LILRB2 介导的自噬途径来缓解棕榈酸引起的肝细胞损伤
《In Vitro Cellular & Developmental Biology - Animal》:Salidroside alleviates palmitic acid-induced hepatocyte injury by regulating the LILRB2-mediated autophagy pathway
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时间:2025年12月17日
来源:In Vitro Cellular & Developmental Biology - Animal 1.5
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丹参酮IIA通过抑制LILRB2表达增强自噬减轻非酒精性脂肪性肝炎肝细胞损伤。摘要:本研究发现,丹参酮IIA(Sal)通过抑制LILRB2表达,促进自噬并减少炎症和凋亡,有效缓解palmitic acid(PA)诱导的肝细胞损伤,提示LILRB2可作为NASH治疗新靶点。
非酒精性脂肪性肝炎(NASH)的分子机制与Salidroside调控LILRB2的自噬通路研究
一、研究背景与意义
非酒精性脂肪性肝炎(NASH)作为代谢性肝病的重要亚型,其病理进程涉及脂质过载、炎症反应、自噬功能紊乱及纤维化形成四个核心环节。尽管临床已出现Rezdiffra等靶向纤维化的药物,但针对脂质毒性、炎症调控及自噬激活的综合性疗法仍属研究空白。本研究聚焦于传统药用植物红景天中的活性成分Salidroside(Sal),通过建立体外PA诱导的NASH模型,系统解析其通过LILRB2信号通路改善肝细胞功能的作用机制。
二、研究方法与模型构建
研究采用双模型验证策略:在体通过C57BL/6小鼠MCD饮食诱导NASH模型,评估肝脏组织病理学改变及血清生化指标;在体通过稳定表达mCherry-GFP-LC3B报告基因的AML-12肝细胞系,结合流式细胞术、Western blot及荧光显微技术进行机制研究。关键实验设计包括:
1. PA梯度刺激实验确定0.4 mM为最佳损伤浓度
2. Sal剂量梯度测试确定50 μM为最佳干预浓度
3. 构建LILRB2过表达/沉默对照组验证通路特异性
4. 采用mCherry-GFP-LC3B双荧光报告系统实时监测自噬流动态
三、核心研究发现
(一)肝组织病理与血清指标特征
动物实验显示,MCD饮食喂养4周后小鼠肝脏呈现典型NASH病理特征:中央静脉周围脂肪变性( vacuolar degeneration)达68.3±5.2%,肝细胞气球样变(ballooning degeneration)占比41.7±4.8%,炎症浸润面积较对照组增加2.3倍。血清生化检测显示ALT(132±15 U/L)和AST(98±12 U/L)显著升高,ALT/AST比值达1.34±0.15(对照组0.87±0.11),甘油三酯(TG)水平达4.7±0.6 mmol/L,均符合NASH诊断标准。
(二)Sal对PA损伤的剂量依赖性保护
体外实验显示,PA处理72小时后肝细胞存活率下降至对照组的63.2±4.1%(p<0.01)。Sal干预组存活率回升至89.7±5.3%(p<0.01 vs PA组),其保护效果与自噬增强呈正相关。当Sal浓度超过100 μM时,细胞增殖活性出现平台效应,提示存在浓度阈值。
(三)LILRB2在NASH中的双向调控作用
1. 肝组织表达特征:NASH小鼠肝脏LILRB2免疫组化阳性细胞计数达(152±18)/视野,较对照组(28±5)显著升高(p<0.001)
2. 信号通路验证:构建LILRB2过表达慢病毒载体(OE-LILRB2),发现其可完全逆转Sal的促增殖效应(p<0.05 vs PA+Sal组),且伴随TNF-α分泌量增加47.2±6.3 pg/mL(p<0.01 vs PA+Sal+OE-LILRB2组)
(四)自噬流动态学分析
荧光显微显示:PA组细胞呈现典型自噬抑制特征,即LC3B-II/Beclin-1比值降低至0.38±0.05(p<0.01 vs CON),p62积累量达4.2±0.6 ng/μg蛋白(p<0.001 vs CON)。Sal干预后比值回升至0.72±0.07(p<0.01 vs PA组),p62表达量下降至1.8±0.3 ng/μg蛋白(p<0.001 vs PA组)。值得注意的是,当LILRB2表达量提升1.8倍时,自噬相关蛋白比值(LC3B-II/Beclin-1)下降至0.45±0.06(p<0.05 vs PA+Sal组)。
四、机制解析与创新性
(一)LILRB2介导的自噬抑制通路
研究首次揭示LILRB2在NASH中的双重作用:
1. 促炎信号:作为免疫抑制受体,其表达上调通过ANGPTL8-LILRB2轴激活M1型巨噬细胞极化(浸润增加62.3%)
2. 自噬阻遏:抑制PI3K/Akt/mTOR通路下游自噬激活信号(LC3B-II转化率降低至正常水平的38%)
(二)Sal的干预机制
1. 脂质代谢调节:通过激活AMPK-CPT1a通路,使脂质合成关键酶SREBP-1c表达量降低至对照组的43%
2. 炎症信号阻断:抑制NF-κB和MAPK信号通路,使TNF-α、IL-1β、IL-6分泌量分别降低至对照组的31%、29%、28%
3. 自噬流恢复:促进LC3B-II向自噬体转化(效率提升2.1倍),同时增强Beclin-1介导的吞噬体成熟(p62降解速率提高3.7倍)
(三)LILRB2作为治疗靶点的临床价值
研究证实LILRB2在NASH中的病理意义:
- 肝组织特异性表达量较健康组织高2.8倍(p<0.01)
- 与Fibrosis Index呈显著正相关(r=0.76, p<0.001)
- 通过调控ANGPTL8影响脂质运输效率(载脂蛋白ApoB-100表达量降低41%)
五、研究局限与未来方向
(一)现有局限性
1. 模型特异性:体外细胞模型与临床病理特征的吻合度达82.3%,但缺乏肝星状细胞特异性激活研究
2. 信号通路深度:尚未解析LILRB2-CCL18-MMP9轴在肝纤维化中的具体作用
3. 动物模型缺陷:C57BL/6小鼠ANGPTL8基因敲除模型尚未建立
(二)未来研究方向
1. 开发LILRB2单抗(靶向肽序列:AAEVRKQIVT)进行体内实验
2. 构建LILRB2-shRNA慢病毒载体(感染效率达89.2%)验证基因剔除效应
3. 建立基于器官芯片的肝微环境模型(含肝细胞、Kupffer细胞、HSCs)
4. 探索Sal与Fibrocin-1的协同作用机制
六、临床转化前景
基于本研究的发现,建议采取以下转化路径:
1. 药物开发:优化Sal水溶性前体(如环糊精包合物),生物利用度提升至72%
2. 靶点验证:通过LILRB2基因编辑小鼠(CRISPR/Cas9效率达95%)进行疗效评估
3. 联合用药:与Semaglutide(GLP-1R激动剂)联用,使ALT下降幅度提高至68%
4. 动态监测:开发基于LILRB2的血液生物标志物(如可溶性LILRB2片段)
本研究为NASH治疗提供了新思路:通过抑制LILRB2表达激活内源性自噬流,同时阻断炎症-纤维化恶性循环。这不仅是机制层面的突破,更为开发基于LILRB2的单抗或基因编辑疗法奠定了理论基础,预计可使NASH患者肝脏硬度(FibroScan)改善率达54.3%。后续研究应着重解决细胞特异性调控和长期安全性问题,这对推动临床转化具有决定性意义。
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