miR-207 通过多靶点调节 TGF-β1/SMADs 信号通路,在小鼠体内抑制成纤维细胞向肌成纤维细胞的转化,从而减轻二氧化硅引起的肺纤维化
《Toxicology and Applied Pharmacology》:miR-207 mitigates silica-induced pulmonary fibrosis by suppressing fibroblast-to-Myofibroblast transition via multi-target modulation of the TGF-β1/SMADs signaling pathways in mice
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时间:2025年11月30日
来源:Toxicology and Applied Pharmacology 3.4
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本研究通过建立小鼠硅肺模型,探究miR-207对TGF-β1/SMADs通路及肺纤维化的调控机制。结果显示,miR-207通过靶向Smad2和Smad7,协调下调Smad2并上调Smad7,抑制纤维母细胞向肌成纤维细胞转化(FMT),减少α-SMA、FAP-1和Vimentin表达,降低I/III型胶原沉积,从而抑制硅肺纤维化。该机制为硅肺治疗提供新靶点。
杜淑玲|崔圆圆|周璇|龚伟雷|张兆强|韩贵志
中国山东省济宁市济宁医学院公共卫生学院
摘要
引言
矽肺病是一种由长期吸入高浓度可吸入结晶二氧化硅(RCS)引起的职业病(Fazio等人,2023年)。二氧化硅的毒性和矽肺病的风险取决于其浓度和累积暴露量,许多国家为8小时工作周期内的RCS暴露设定了职业暴露限值(OELs),范围从0.025 mg/m3到0.35 mg/m3不等(Hoy等人,2022年;Ichikawa等人,2024年)。然而,越来越多的证据表明,即使暴露于低于OELs的低浓度二氧化硅粉尘,也仍会增加矽肺病的风险(Wang等人,2025年)。矽肺病的预防和治疗仍然具有挑战性。矽肺病的进展是由肌成纤维细胞的持续激活和增殖驱动的(Wang等人,2024年)。当SiO?颗粒沉积在远端肺泡空间时,会被肺泡巨噬细胞(AMs)迅速识别并吞噬(Liu等人,2017年)。被吞噬的晶体刺激AMs分泌大量转化生长因子-β1(TGF-β1)(Ganesan等人,2022年),从而启动驻留成纤维细胞中的TGF-β1/SMADs信号级联反应。这一通路的长期激活会促进肌成纤维细胞的分化和增殖(Song等人,2013年),导致过多的细胞外基质(ECM)沉积,形成特征性的矽肺结节,最终引发肺纤维化(Li等人,2019年)。
TGF-β1/SMADs通路对矽肺纤维化至关重要,SMADs在其中起核心作用并决定通路的激活(Wang等人,2011年)。在已知的九种SMADs中,Smad2、Smad3和Smad7与肺纤维化密切相关(Feng等人,2020年;Zhang等人,2024a)。Smad2和Smad3通过激活TGF-β1/SMAD2/3通路促进纤维化(Chekmarev等人,2021年;Frangogiannis,2020年),而Smad7则通过TGF-β1/SMAD7通路负调控Smad2和Smad3,从而抑制纤维化过程(Li等人,2019年)。此外,Smad7还能招募E3泛素连接酶Smurf1和Smurf2,促进TGF-β受体I(TβRI)的泛素化及其降解,进而抑制TGF-β1/SMAD2/3通路(Yan等人,2009年)。Smad2、Smad3和Smad7水平的改变可以调节TGF-β1/SMADs通路,从而影响矽肺病的进展。
实际上,在TGF-β1/SMADs通路中,SMADs受到microRNA(miRNA)的精确调控(Tian等人,2025年)。我们之前的研究表明,miR-207通过沉默Smad3来抑制SiO?诱导的肺纤维化,从而调节TGF-β1/SMAD3信号通路(Zhao等人,2025年)。但仍有两个关键问题尚未解决:① miRNA与靶基因的结合并非一对一对应关系,miRNA通常会与多个靶mRNA结合(Cheng等人,2020年;Zhao等人,2025年)。因此,我们想了解miR-207是否还靶向其他与肺纤维化相关的SMADs。② 研究表明,肌成纤维细胞主要来源于成纤维细胞和II型肺泡上皮细胞(AT II),其中40–65%来自间质成纤维细胞的转分化(Zhang等人,2025年;Zhang等人,2021b)。因此,我们进一步探讨了miR-207是否通过抑制FMT来抑制矽肺病。总之,本研究旨在系统全面地阐明miR-207对矽肺纤维化的抑制作用及其机制。
在本研究中,我们通过鼻腔给药建立了矽肺病的小鼠模型(Li等人,2021a)。随后通过尾静脉将Adeno-associated virus(AAV)介导的miR-207模拟物或抑制剂注入小鼠体内。确认转染成功后,使用RT-qPCR和Western blot检测Smad2和Smad7的mRNA和蛋白质水平,以评估TGF-β1/SMADs通路的活性。用苏木精和伊红(HE)染色肺部样本,以评估SiO?诱导的肺纤维化中的炎症和组织损伤。同时测量I型及III型胶原蛋白的水平,以评估肺纤维化的程度(Zhao等人,2024年)。此外,还分析了α-SMA、FAP-1和Vimentin的表达情况,以评估FMT的程度。本研究旨在探讨miR-207对TGF-β1/SMADs通路的调控机制及其对矽肺纤维化的潜在抑制作用,为矽肺病的干预提供理论依据。
动物
本研究使用了济宁医学院实验动物中心提供的50只6–8周大的雄性无特定病原体(SPF)C57BL/6J小鼠(体重:17–20克,SYXK 2022–0006),这些小鼠在济宁医学院实验动物中心饲养。每笼饲养5只小鼠,提供自由食物和水源,处于标准饲养条件下。实验环境的照明时间为12小时光照/12小时黑暗周期(12:12 LD),光照时间为早上7点,黑暗时间为晚上7点。
miR-207与Smads结合的生物信息学分析
使用miRwalk网站(Jing和Li,2025年)进行了miR-207与Smads结合的生物信息学分析,该网站用于预测miRNA与靶基因的结合细节。结果显示,miR-207可能通过各自的结合位点与Smad2、Smad3和Smad7结合,从而可能产生不同的分子生物学效应(O'Brien等人,2018年)(表1)。
组织病理学分析
与对照组相比,模型组小鼠的肺组织中可见炎症细胞浸润
讨论
体内基因治疗利用专门的载体将治疗药物直接输送到患者体内,实现基因转移、表达或编辑(He等人,2023年;Volodina和Smirnikhina,2025年)。与体外基因治疗不同,体内基因治疗无需移除、修改和重新输注细胞,因此操作更简单,适用范围更广(Bimbo等人,2025年;Milani等人,2025年)。因此,它迅速成为一种重要的治疗方法。
作者贡献声明
杜淑玲:撰写——初稿;方法学部分。
崔圆圆:方法学部分。
周璇:撰写——审阅与编辑。
龚伟雷:撰写——审阅与编辑。
张兆强:撰写——审阅与编辑。
韩贵志:撰写——审阅与编辑。
利益冲突声明
作者声明没有已知的财务利益或个人关系可能影响本文的研究结果。
致谢
本项目得到了“林和院士新医学研究基金”(项目编号:JYHL2022MS18)和“济宁医学院高级培训计划”(项目编号:JYGC2022KJ009)的支持。
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