工程化CRISPR关联IscB系统开发微型基因组编辑工具及其在哺乳动物细胞和胚胎中的应用

《Nature Communications》:Engineering a CRISPR-associated IscB system for developing miniature genome-editing tools in human cells and mouse embryos

【字体: 时间:2025年11月28日 来源:Nature Communications 15.7

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  本研究针对传统CRISPR-Cas系统尺寸过大难以实现单AAV递送的问题,对识别灵活TAM(NAC)的DellscB系统进行蛋白与sgRNA工程化改造,获得活性提升48.9倍的enDellscB编辑器,并成功开发出微型碱基编辑器ICBE/IABE和小鼠疾病模型。该研究为体内基因治疗提供了新型微型工具,发表于《Nature Communications》。

  
基因组编辑技术CRISPR-Cas系统自问世以来彻底改变了生命科学研究的格局,但传统Cas9和Cas12a蛋白较大的尺寸(通常超过1000个氨基酸)限制了其在体内的应用,尤其是通过腺相关病毒(AAV)载体的递送。AAV作为FDA批准的常用核酸药物递送载体,其装载上限仅为4.7 kb,这使得开发紧凑型基因编辑工具成为当务之急。近年来,科学家们陆续发现了Cas12f、Cas12j等微型核酸酶,但它们在编辑效率和适用范围上仍存在局限。IscB作为Cas9的推测祖先蛋白,尺寸仅为400个氨基酸左右,具有天然的小尺寸优势,但其在真核细胞中的编辑活性较低,且已知的OgeulscB系统需要复杂的靶标相邻基序(TAM, NWRRNA),限制了其应用范围。
在这项发表于《Nature Communications》的研究中,张飞等人聚焦于从特拉华湾水生样本宏基因组中鉴定出的CRISPR关联IscB系统——DellscB。该系统识别更灵活的TAM(NAC),且尺寸更为紧凑(457个氨基酸)。研究人员通过系统的蛋白质和sgRNA工程化改造,显著提升了DellscB的编辑活性,并开发了基于该系统的微型碱基编辑器,最终在人类细胞和小鼠胚胎中验证了其高效编辑能力。
研究团队采用蛋白质结构预测(AlphaFold2)、多位点序列比对、sgRNA scaffold截短与优化、荧光报告系统筛选、高通量测序分析、GUIDE-seq全基因组脱靶评估、小鼠胚胎显微注射等技术方法。人类胚胎肾293T(HEK293T)细胞和小鼠神经瘤2a(N2a)细胞作为主要体外模型,C57BL/6J小鼠胚胎用于体内功能验证。
DellscB在E.coli和人类细胞中实现程序化质粒DNA切割
研究人员首先通过质粒干扰实验证明DellscB能在大肠杆菌中高效切割质粒DNA,其效率与SpCas9相当。通过分析DellscB的非编码RNA(ncRNA)结构,团队截断了直接重复/反重复区域并去除多T信号,获得了能在真核细胞中功能的sgRNA-V1版本。荧光报告系统检测显示,野生型DellscB在HEK293T细胞中的质粒切割效率仅为5%,且N端融合核定位信号(NLS)会显著抑制其活性。
工程化DellscB蛋白提升哺乳动物细胞编辑效率
通过将高活性enIscB突变位点映射至DellscB,并结合多序列比对筛选出122个精氨酸替换突变和66个自然发生突变,研究人员获得了14个活性提升超过1.2倍的变异体。其中S97K突变显示最高活性,最终组合10个变异体(S97K、V396K、E317R、C12R、Q340K、W117F、A142P、S100A、G104S、S436R)形成的DellscB-V10.1,活性比野生型提高约5倍。
工程化DellscB sgRNA scaffold进一步提升活性
研究人员对sgRNA-V1进行茎环截短和稳定性优化,发现截短stem1.3和stem2区域(sgRNA-V2/V2.1)及引入假结区柔性突变(U205A,sgRNA-V4)均可提升活性。最终组合版本sgRNA-V5与DellscB-V10.1形成的enDellscB系统,在报告基因检测中活性超过enIscB-T5E。
评估enDellscB和enDellscB-T5E的基因组编辑效率和精确性
在24个内源基因位点上,enDellscB的编辑效率比野生型DellscB平均提高48.9倍。enDellscB-T5E的编辑效率(54.27±28.07%)与enIscB-T5E(53.70±29.84%)相当。 indel模式分析显示enDellscB产生约90 bp的宽缺失范围,而enDellscB-T5E的缺失范围更窄(约60 bp)且几乎不产生插入事件。 Cas-OFFinder预测和GUIDE-seq全基因组脱靶分析表明,enDellscB-T5E在脱靶位点的编辑比例更高,提示T5E融合在提高靶向活性的同时也可能增加脱靶风险。
基于enDellscB nickase开发碱基编辑器
通过突变RuvC(D60A)或HNH(H226A)结构域活性位点获得nickase版本,研究人员构建了C端融合hAPOBEC3A(高保真版本)和2xUGI的微型胞嘧啶碱基编辑器(ICBE),以及C端融合TadA二聚体的微型腺嘌呤碱基编辑器(IABE)。ICBE的编辑窗口为靶点位置-1至12,最高效率达49.26±23.22%;IABE的编辑窗口为-4至12,最高效率为60.22±22.47%,两者均表现出与基于enIscB的编辑器相当的效率。
enDellscB和enDellscB-T5E高效生成小鼠模型
通过向小鼠受精卵共注射enDellscB/enDellscB-T5E mRNA和靶向酪氨酸酶基因(Tyr)的sgRNA,成功获得毛色变白的F0代小鼠。enDellscB和enDellscB-T5E编辑组的平均indel效率分别为96.77%和98.67%,证明其在胚胎中具有高效编辑能力。部分小鼠出现黑白相间的毛色斑块,基因组测序证实其为嵌合体。
研究结论表明,通过对DellscB系统的蛋白质和sgRNA进行多维度工程化改造,研究人员成功开发了具有高效编辑能力的enDellscB系列工具。与OgeulscB相比,DellscB具有更灵活的TAM(NAC)和更高的靶向密度(人类CDS区域内为10.10% vs 7.39%)。基于结构预测分析发现,N端融合NLS或脱氨酶可能通过空间位阻影响核糖核蛋白复合物稳定性,这为后续优化提供了方向。该研究不仅扩展了微型基因编辑工具箱,也为基于AAV递送的体内基因治疗提供了新工具,同时为工程化RNA引导核酸酶(RGN)提供了可借鉴的策略。值得注意的是,编辑窗口较宽和脱靶效应仍是未来应用中需要关注的问题,通过插入REC结构域或内部融合脱氨酶可能有望进一步优化编辑器性能。
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