从坦桑尼亚的家猪中分离出的两种基因型II非洲猪瘟病毒的近乎完整的基因组
《Microbiology Resource Announcements》:Near-complete genome of two genotype II African swine fever viruses recovered from domestic pigs in Tanzania
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时间:2025年10月27日
来源:Microbiology Resource Announcements 0.6
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非洲猪瘟病毒II型毒株基因组测序及遗传分析发现坦桑尼亚Mbozi地区2017年分离的两个近完整基因组通过tiled amplicon Oxford nanopore测序获得,与全球已知II型毒株亲缘关系密切,基因组存在多处插入/缺失突变及末端重复区缺失。
摘要
2017年,在坦桑尼亚姆博兹地区从家猪中分离出两种接近完整的II型非洲猪瘟病毒(ASFV)基因组,采用 tiled amplicon Oxford nanopore测序技术进行测序。本研究描述的这两种ASFV基因组与其他全球报道的II型分离株具有密切关系。
公告
非洲猪瘟(ASF)是一种跨境动物疾病,致死率可达100%(
1)。对ASF病毒(ASFV)进行全基因组测序有助于制定控制策略。ASFV是一种有包膜的双链DNA病毒,属于
Asfarviridae科、
Asfivirus属(
2)。为克服ASFV测序中的挑战(包括宿主DNA的干扰),研究人员开发了tiled amplicon测序方法(
3,
4)。
在2017年坦桑尼亚南部姆博兹地区ASF疫情期间收集的组织样本(包括脾脏和肠系膜淋巴结,样本编号为ASFV/TAN/17/Mbozi/1和ASFV/TAN/17/Mbozi/2)经过检测后被归类为II型ASFV(
5)。DNA提取使用QIAamp DNA纯化试剂盒(Qiagen,德国希尔德恩),随后按照先前描述的方法进行聚合酶链反应(PCR)扩增(
3)。共使用32对tiled引物对,通过PCR Bio VeriFi Hot Start高保真DNA聚合酶扩增约7 kb的片段,相邻扩增子之间有1 kb的重叠区域。扩增子大小通过1%琼脂糖凝胶电泳验证(Gel DocTM EZ Imager,Bio-Rad,美国赫拉克勒斯)。扩增子被汇集用于文库制备,使用ligation sequencing试剂盒(SQK-LSK109,Oxford Nanopore Technologies,英国牛津),并在R9.4.1流式细胞仪上使用MinION MK1c进行测序,碱基 calling和多路复用分析由Guppy v5.0.14软件(Oxford Nanopore Technologies,英国牛津)完成。数据分析采用Lilo流程(
https://github.com/amandawarr/Lilo):该流程利用参考序列通过bedtools v2.30.0对扩增子进行排序和分离,根据最高质量的读段进行优化处理,同时使用Porechop v0.2.3去除引物序列,最后使用Scaffold_builder v2.3进行基因组组装。由于测序数据中存在嵌合扩增子导致的组装问题,对Lilo流程进行了修改:在“assign”规则中调整了bedtools intersect命令参数,添加“-F 0.85 f 0.85”以限制只选择包含目标扩增子的序列,同时对真实插入/缺失片段保持灵活性。最终组装结果使用Quality Assessment Tool(QUAST)5.0.2版本进行评估(
6)。
组装得到的ASFV株的核苷酸序列长度分别为172,585 bp和167,022 bp,平均覆盖率为每个核苷酸2,500至4,370个读段,GC含量分别为38.95%和39.17%(
表1)。经过NCBI GenBank数据库搜索和系统发育重建(
图1),本研究描述的序列与TAN/01/2011 ASFV分离株(
OQ434234)(
7)属于同一II型,核苷酸一致性为99.82%,查询覆盖率为100%。除了两种序列缺乏高度重复的3′和5′端粒区域外,与II型ASFV参考基因组Georgia2007/1(
FR682468.2)比对后发现存在插入/缺失现象:ASFV/TAN/17/Mbozi/1在16,190–21,665位点和169,120–174,340位点分别缺失了5,465 bp和5,220 bp的片段,导致两种ASFV株的MGF 360-1Lb CDS和ASFV G ACD 01980 CDS区域发生截断。
图1 使用本研究描述的ASFV全基因组核苷酸序列(用黑色圆圈标记)以及NCBI GenBank中已报道的序列构建的最大似然系统发育树。系统发育分析基于Tamura(992)核苷酸替换模型,并通过贝叶斯信息准则模型选择确定。序列比对使用MAFFT 7.221版本,系统发育树通过MEGA 12中的1,000次自助法重建。刻度条表示每个位置的核苷酸替换频率,节点值显示自助法支持百分比。表1 本研究测序结果的基本统计信息总结| 分离株ID | 总读段数 | ASFV特异性读段数 | N50值 | ASFV特异性读段百分比 | 平均phred质量分数 | 组装后的ASFV基因组长度(bp) | 平均基因组覆盖深度 | GC含量(%) | 登录号 |
|---|
| ASFV/TAN/17/Mbozi/1 | 245,015 | 212,621 | 6,930 | 86.78 | 11.5 | 172,585 | 2,500 | 38.95 | PV740684 |
| ASFV/TAN/17/Mbozi/2 | 482,432 | 419,948 | 6,031 | 87.056 | 11.7 | 167,022 | 4,370 | 39.17 | PV740683 |
致谢
本研究得到了Oliver R. Tambo非洲研究主席计划(ORTARChI)(DPRTC/R/126/SACIDS/1/2022)的支持,该计划得到了坦桑尼亚科学技术委员会(COSTECH)、南非国家研究基金会(NRF)、南非科学与创新部(DSI)、加拿大国际发展研究中心(IDRC)以及Oliver & Adelaide Tambo基金会(OATF)的资助。JNH是ORTARChI病毒基因组学领域的博士后研究员,同时获得了应用科学、工程和技术技能合作伙伴关系(PASET)的初级研究员研究奖(RSIF/JIRA/001)和区域奖学金与创新基金(RSIF)的资助;GM是ORTARChI病毒流行病学领域的研究员。本研究使用的流式细胞仪和PCR用DNA聚合酶由Oxford Nanopore Technologies PLC提供。
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