综述:通过基因编辑调控花卉衰老:观赏植物和切花的前景
《Plant Growth Regulation》:Manipulation of floral senescence through gene editing: prospects for ornamental and cut flowers
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时间:2025年10月25日
来源:Plant Growth Regulation 3.9
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本综述系统阐述了CRISPR-Cas9基因编辑技术在调控花卉衰老中的应用前景。文章详细解析了乙烯(C2H4)信号通路(如RhEIN2、DcACS1等关键靶点)在花瓣衰老中的核心作用,并通过多物种案例(玫瑰、康乃馨等)验证基因编辑可显著延长切花瓶插寿命。该技术为花卉品质改良提供了精准高效的解决方案。
基因组编辑是指对DNA序列进行定向修饰的技术。其发展历程可追溯至1978年限制性内切酶的发现。该技术依赖序列特异性核酸酶(SSNs),能够在基因组特定位点产生DNA双链断裂(DSB),进而触发细胞固有的DNA修复机制(如易错的非同源末端连接NHEJ或精确的同源定向修复HDR)实现靶向突变。目前主要基因编辑工具包括归巢内切酶、锌指核酸酶(ZFNs)、转录激活因子样效应物核酸酶(TALENs)以及CRISPR-Cas9系统。其中CRISPR-Cas9因其设计简便、成本低且可多重编辑的优势,已成为植物基因功能研究的核心工具。
工程化CRISPR系统主要由向导RNA(gRNA)和Cas9核酸酶组成。gRNA通过5'端20nt的间隔序列与靶DNA互补结合,3'端支架结构负责招募Cas9蛋白。当gRNA与靶DNA结合后,Cas9在原型间隔序列邻近基序(PAM)上游3bp处引入DSB。细胞通过NHEJ修复可能造成基因敲除,而借助外源模板可通过HDR实现精准插入。编辑流程包括靶点筛选、gRNA设计、载体构建、植物转化(农杆菌法或PEG介导原生质体转化)、突变体筛选及再生验证。
花瓣衰老是受发育信号和环境因素共同调控的程序性细胞死亡(PCD)过程。乙烯是大多数乙烯敏感型花卉(如康乃馨、玫瑰)衰老的核心诱导因子,其生物合成途径中,S-腺苷甲硫氨酸(SAM)在ACC合成酶(ACS)催化下生成1-氨基环丙烷-1-羧酸(ACC),再经ACC氧化酶(ACO)转化为乙烯。此外,自噬相关基因(如ATG6)通过调控营养回收影响衰老进程,而花粉授粉可触发乙烯爆发式产生,加速花瓣萎蔫。
- 1.玫瑰(Rosa hybrida):通过编辑乙烯信号通路关键基因RhEIN2,获得突变体花朵开放受阻,证实该基因在乙烯响应中的核心作用。
- 2.康乃馨(Dianthus caryophyllus):利用RNP复合体递送系统编辑DcACS1和DcACO1基因,突变频率最高达58.5%,为延长瓶插寿命奠定基础。
- 3.日本龙胆(Gentiana scabra):敲除EPHEMERAL1-LIKE(EPH1L)基因可显著延缓花瓣褐变,并建立暗诱导衰老评价体系。
- 4.矮牵牛(Petunia hybrida):PhACO1基因敲除导致乙烯合成减少,花期延长;而PhATG6缺失则加速PCD并影响磷元素回收。
- 5.风铃草(Campanula portenschlagiana):CpEill基因编辑株系对外源乙烯耐受性增强,但内源衰老机制未受影响,表明外源与年龄依赖性衰老存在不同调控通路。
当前基因编辑仍面临脱靶效应、递送效率(如原生质体再生困难)及转基因残留等问题。新兴的嫁接介导编辑系统(如利用tRNA样序列TLS运输CRISPR组分)可实现无转基因整合的编辑。未来研究需聚焦激素互作(如ABA、细胞分裂素)、养分调控与衰老基因网络的协同作用,并通过多靶点编辑培育具复合优良性状的观赏品种。
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