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综述:小细胞外囊泡的起源、现状、未来前景及应用
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年04月18日 来源:Stem Cell Research & Therapy 7.1
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本文系统综述了小细胞外囊泡(sEVs)在疾病诊断、治疗递送和组织修复中的关键作用。作者详细解析了sEVs的生物发生机制、分离鉴定技术(如超速离心、纳米流式细胞术),重点阐述了间充质干细胞(MSC)来源sEVs通过miRNA(如miR-21-5p、miR-146a)调控PI3K/Akt、Wnt/β-catenin等通路促进骨/软骨修复、伤口愈合和神经再生,并探讨了工程化修饰(如LAMP-2B融合蛋白)提升靶向性的策略,为sEVs的临床转化提供重要参考。
细胞释放的纳米级膜结构——小细胞外囊泡(sEVs)根据起源可分为外泌体(30-150 nm)、微泡(100-1000 nm)和凋亡小体(0.5-5 μm)。外泌体通过内体途径形成:早期分选内体(ESE)成熟为晚期分选内体(LSE)后内陷形成多泡体(MVB),最终释放内含囊泡(ILV)。这一过程依赖ESCRT复合物或非经典途径如Rab31 GTP酶介导。迁移体(1-3 μm)和肿瘤囊泡(oncosomes)等新型亚群的发现,进一步拓展了细胞外囊泡的多样性图谱。
超速离心仍是sEVs分离的"金标准",但密度梯度离心可提高纯度(90%以上)。新兴的微流控平台整合多种力场,实现快速自动化分选。鉴定方面,透射电镜(TEM)可直观呈现杯状双层膜结构,纳米流式细胞术(NanoFCM)能同时分析粒径和表面标志物(CD9/CD63)。表面增强拉曼光谱(SERS)对miRNA检测灵敏度达10-18 M,为液态活检提供利器。
间充质干细胞(MSC)来源sEVs展现出卓越的修复潜能:
sEVs携带的核酸和蛋白谱可反映母细胞病理状态:
通过基因编辑和化学修饰可增强sEVs功能:
尽管sEVs在组织修复中可避免MSC治疗的伦理争议和致瘤风险,但工业化生产仍面临瓶颈——差速离心法处理100 mL培养基需6小时仅获得109颗粒。未来需建立标准化质控体系,解决工程化sEVs的异质性问题,并通过类器官模型验证其跨物种安全性。随着单囊泡分析技术和微流控分选设备的进步,sEVs有望成为精准医疗的重要载体。
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