多重变异效应分析(Multiplexed assays of variant effect,MAVEs)为大规模提供变异效应功能证据带来希望,其中基于基因组编辑的技术在检测疾病基因中的功能丧失(loss-of-function,LoF)变异方面表现出色,不过现有方法都存在局限性。饱和基因组编辑(Saturation genome editing,SGE)受同源定向修复(homology-directed DNA repair,HDR)效率低和实验区域限制的影响,可扩展性不佳;碱基编辑筛选虽可扩展性强,但存在编辑限制和脱靶风险。
Prime 编辑(PE)系统理论上能在基因组中安装几乎任何短变异,且近期其在人类细胞中的性能得到显著提升。此前虽有研究利用 PE 进行变异检测,但该技术在大规模功能表征变异方面的潜力仍有待探索,本研究旨在优化 PE 平台,评估其在编码区和非编码区检测多种变异的能力。
构建 pooled PE 筛选平台:研究人员创建了稳定表达优化的 Prime 编辑器 PEmax 的单克隆 HAP1 细胞系,同时生成了表达显性负性 MLH1 蛋白(MLH1dn)的 HAP1 细胞系,以增强 PE 效率。为实现高效安装多样化编辑,对关键组件进行优化,包括使用工程化 pegRNA(epegRNA),其通过添加 tevopreQ1作为 3′ 延伸帽来提高编辑效率;在每个 pegRNA 下游引入 55 bp 的基因组靶序列作为替代靶标(surrogate target,ST),用于评估 pegRNA 编辑效率;采用共选择策略,通过对ATP1A1基因进行编辑使细胞获得对乌本苷(ouabain)的抗性,从而富集编辑细胞。实验结果表明,共选择策略有效提高了编辑细胞的富集率,稳定的 pegRNA 支架(如 F + E 支架)能显著提升 PE 效率,且单核苷酸变异(single nucleotide variants,SNVs)作为单个突变引入时编辑率更高。
平台优势与应用前景:该 PE 平台可在基因组几乎任何位置安装短变异,通过纳入 ST 进行 pegRNA 筛选提高了数据质量。研究为未来在 HAP1 细胞中进行 PE 筛选提供了具体建议,包括延长编辑时间、使用稳定的 pegRNA 支架和纳入 ST 等。随着 PE 试剂和 pegRNA 设计工具的不断改进,该平台有望实现更大规模的筛选,为临床测序中变异的优先级排序和功能研究提供有力支持,还可用于训练和优化预测模型,助力人类疾病相关变异的识别。