2016开年CRISPR技术大爆发

　　

生物通报道：CRISPR这种于2007年发现的一种细菌抵御病毒的特殊防御机制，经过了2012年的机制阐述，2013年的崭露头角，以及2014年的技术备受推崇之后，迎来了最为激动人心的发展——技术在临床上的转化。2016年开年短短的半个月时间里，CRISPR在多种疾病治疗中大显身手。

杜氏肌营养不良症

三个独立研究小组提供了初步的研究证据表明，通过编辑一个与肌肉功能相关的基因，修复杜氏肌营养不良症小鼠的一些肌肉功能，可以治愈这一遗传性疾病。这标志着第一次在完全发育的活体哺乳动物中CRISPR采用一种有潜力转化为人类疗法的策略，成功治疗了一种遗传疾病。

在每5,000名新生男婴中就有一人罹患杜氏肌营养不良症。大多数患者到10岁需要坐轮椅，他们在20多岁30出头就会死去。由于突变位于X染色体上，因此有两条X染色体的女童应该至少有一个功能性dystrophin基因拷贝。

此前在2014年科学家们首次利用CRISPR/Cas9 纠正了小鼠生殖细胞突变，防止了肌肉萎缩症，这为利用CRISPR技术治疗DMD铺平了道路。但这也同时提出了这种技术临床应用的几个问题，由于在人体内进行生殖细胞编辑不可行，因此需要将CRISPR组件传递到产后组织中。

最新研究通过采用一种非致病性载体——腺相关病毒（AAV）来传送这一基因编辑系统克服了其中的一些障碍。研究人员将基因编辑工具包装到了AAV中。利用病毒来作为基因治疗的传送载体，研究人员会从病毒中除去所有有害的基因和复制基因。尽管早期的一些病毒类型因为各种原因，诸如整合到基因组中及引起一些问题或触发免疫应答，不能很好地起作用，AAV是迄今为止已证实特殊的一类病毒。许多人都受到这一病毒的感染，AAV不致病，却能够非常有效地进入到细胞中。三篇Science文章：利用CRISPR治疗遗传疾病

癫痫

来自中国科技大学、中科院广州生物医药与健康研究院等处的中国学者将近年来迅猛发展的基因组编辑技术与iPSC来源的模型结合起来，纠正了癫痫患者iPSC中的致病突变。

癫痫发作，是由于神经抑制与兴奋之间的失衡，包括两种神经亚型以及它们通过突触连接的相互作用。这项研究将CRISPR/Cas9和TALEN介导的基因编辑技术，应用于iPSC为基础的疾病模型，来探讨SCN1A功能性缺失突变所致的癫痫发病机制。

研究人员发现，突变c.a5768G，可导致外源性转染系统中没有Nav1.1流，不仅影响Nav电流量的性质，而且也影响表达Nav1.1的GABA能神经元的Nav激活。Nav的两个变化，进一步减少了幅度，并增强了患者来源的GABA能神经元的动作电位阈值，导致患者来源的神经元网络中的自发性抑制性突触后电流（sIPSCs）减弱。我科学家用CRISPR纠正癫痫致病突变

遗传性失明

美国Cedars-Sinai医学中心的研究人员利用CRISPR/Cas9的技术删除一个可导致失明病的遗传突变。CRISPR/Cas9改编自细菌用来对抗入侵病毒的一种策略。虽然这项研究采用的是大鼠，但这项研究结果是一个重要的里程碑，因为它对人类也有潜在的影响。

视网膜色素变性患者，在疾病的早期阶段出现夜盲症，连同视网膜的萎缩和色素变化、视野缩小，最终失明。虽然总体来说比较罕见，但它是最常见的遗传性视网膜疾病，在美国和欧洲影响大约4000人中的1人。

研究人员设计了一个CRISPR/Cas9系统，来去除一个基因突变——引起眼睛中的感光细胞缺失。他们将这个系统注入年轻的实验室大鼠体内，这种大鼠已被改造成模拟一种遗传性视网膜色素变性，称为常染色体显性遗传，这涉及到该基因的突变。单次注射后，通过视动反射测量——包括转动头部响应运动不同亮度的条纹，研究人员发现，与对照组动物相比，这些大鼠的视力变得更好。华人女学者用CRISPR技术改善遗传性失明

肺癌

来自斯坦福大学医学院的研究人员指出随着CRISPR/Cas技术的改进与成熟，将这种分子手术方法与传统手术、放疗和/或TKI治疗相结合，将有可能显著提高携带EGFR突变的非小细胞肺癌患者的生存率。

在这项研究中，作者提出了这项技术进展的一个潜在的令人兴奋的临床应用——允许个性化的、分子的外科手术，来纠正或破坏突变的EDFR。研究人员在来自患者活检标本的肿瘤中去除了EGFR基因突变，他们发现，EGFR——突变的基因将被传递CRISPR/Cas系统的病毒修复或破坏。

研究人员以最常见的初级和二次EGFR突变，证明了这种方法的可行性。这些建议的基因组DNA“分子手术”，可以一种个性化、并可能永久性的方式，靶定疾病的原因。这种方法可以与传统的手术治疗、放射治疗或化学/靶向治疗相结合。CRISPR基因编辑助力肺癌治疗

裂手裂足畸形

德国科学家们利用外显子测序和CRISPR/Cas基因组编辑，在短时间内鉴定了一种人类肢体缺陷的致病突变。

裂手裂足畸形这种疾病以裂足畸形（split-foot defect）、手指甲畸形和听力损失为特征。研究人员发现，发生这种疾病是因为突变干扰了蛋白激酶ZAK的SAM结构域。

研究显示，小鼠发育中的四肢表达Zak，通过CRISPR/Cas敲除Zak会导致小鼠胚胎死亡。进一步研究表明，删除SAM结构域会诱导与Trp63下调有关的复杂后肢缺陷，而Trp63是裂手/裂足畸形的已知致病基因。用CRISPR迅速锁定致病突变

（生物通：张迪）