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Pyrosequencing技术及其在DNA测序和SNP研究中的应用[创新技巧]
【字体: 大 中 小 】 时间:2003年03月31日 来源:生物通
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生物通特约作者:黄文晋博士 [摘要]Pyrosequencing是新一代DNA序列分析技术,基于该技术的分析系统结合相应软件和试剂可以进行DNA序列分析,SNP分析和SNP频率确定。本文介绍了Pyrosequencing技术的原理和应用。 [关键词] Pyrosequencing DNA序列分析 SNP分析 DNA序列分析技术是现代生命科学研究的核心技术之一,而双脱氧核苷酸链终止法(Sanger法)是目前使用最普遍的DNA序列分析技术。在基于Sanger法的全自动DNA测序技术中,测序反应产生的DNA片段是荧光标记的,这些片段经过平板胶电泳或毛细管电泳得到分离,荧光分子被激发而发光,发出的光信号被检测系统检测。Sanger法的优势在于可以分析未知DNA的序列,且单向反应的读序能力较长,目前的技术可以达到1000bp以上。 在实际工作中,很多情况需要对已知序列的DNA片段进行序列验证,而这种分析往往测几十bp就可以满足需要.在这种情况下,Sanger法未必是最合适的DNA序列分析技术。新发展的Pyrosequencing(焦磷酸测序)技术应该是目前最适合这些应用的DNA序列分析技术。 Pyrosequencing技术是新一代DNA序列分析技术,该技术对DNA的序列分析无须进行电泳,DNA片段无须荧光标记,因此相应的仪器系统无须荧光分子的激发和检测装置.本文将就Pyrosequencing技术的原理和应用进行介绍和讨论. |
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首先通过PCR制备待测序的DNA模板,PCR的引物之一是用生物素标记的。PCR产物和偶连avidin的Sepharose微珠孵育,DNA双链经碱变性分开;纯化得到含生物素标记引物的待测序单链,并和测序引物结合成杂交体。 Pyrosequencing技术是由四种酶催化的同一反应体系中的酶级连反应,四种酶是:DNA聚合酶(DNA polymerase)、硫酸化酶(ATP sulfurylase)、荧光素酶(luciferase)和双磷酸酶(apyrase).反应底物为adenosine 5´ phosphosulfate (APS)、荧光素(luciferin)。反应体系还包括待测序DNA单链和测序引物。反应体系配置好后就可以加入底物dNTP进行序列分析了。 测序反应是这样进行的:在每一轮测序反应中,只能加入四种dNTP(dATP S,dTTP,dCTP,dGTP)之一,如该dNTP与模扳配对,聚合酶就可以催化该dNTP掺入到引物链中并释放焦磷酸基团(PPi)。掺入的dNTP和释放的焦磷酸是等摩尔数目的.注意:反应时deoxyadenosine alfa-thio triphosphate (dATP S)是dATP的替代物,因为DNA聚合酶对dATP S的催化效率比对dATP的催化效率高,且dATP S不是荧光素酶的底物。
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商品化的Pyrosequncing试剂盒通过以下几点来保证反应的有效进行:底物浓度已最佳化,高质量的三磷酸腺苷双磷酸酶保证了所有的dNTP被降解,包括ATP和dATPαS;dNTP降解速率慢于掺入速率,有利于dNTP充分掺入;ATP合成速率快于ATP水解速率,使的ATP浓度和光产生正比于掺入的dNTP数目。 有必要指出的是:Pyrosequencing技术可以确定一个模板的20-30bp的序列。有的研究者经过改进而使该技术的读序长度增加一倍以上[1]。 为了增加信噪比,在Pyrosequencing技术中,用dATPαS取代dATP,因为dATPαS可以比dATP被DNA聚合酶更有效利用,也更有利于阅读富含T的区域,且dATPαS不是荧光素酶的底物。但dATPαS是两种异构体SpdATPαS和RpdATPαS的混合物,聚合酶只能利用SpdATPαS。因此,为了得到最佳反应效率,必需使反应体系中保持最佳浓度的SpdATPαS,但同时增加了相应浓度的无用的RpdATPαS。dATPαS被双磷酸酶降解后的产物是双磷酸酶的抑制剂,所以随着反应进行,被双磷酸酶降解的dATPαS的降解产物浓度越来越大,双磷酸酶的活性越来越低。这可能是Pyrosequencing技术测序长度很短(20-30bp)的主要原因之一。新的革新就在于在反应体系中只加入SpdATPαS,这样一来可以大大降低dATPαS降解产物的浓度,维持双磷酸酶较长时间的活性。目前这个革新可以使Pyrosequencing技术的测序长度增加最少一倍,达到50至上百bp。 Pyrosequencing技术对DNA片段的序列分析的读序长度有限,但这并不影响其在生命科学研究中的价值.我们知道,在很多场合中,我们对DNA序列分析的要求是读序越长越好,比如诸如人类基因组计划的工作,而在很多场合中,读序长度并不是主要指标,读序精确和能说明问题是主要指标,比如分子临床诊断领域,对细菌和其他病原微生物的分子诊断,只需对最能代表该微生物的DNA片段进行分析即可,最能代表该微生物的DNA片段往往也就十几到几十bp。可以提供序列资料的分子诊断是分子诊断的黄金标准,其权威性比其他DNA分析方法如NORTHERN,基因芯片和定量RT-PCR技术更好。 SNP研究大致分为两个部分,一是SNP数据库的建立,二是SNP功能的研究。一种生物的所有SNP的数据库的建立是一件很大的工程,可以承担该工作的是那些具有大规模基因组测序能力的研究单位,而且数据库的建立很大程度上依赖Sanger法测序。但众所周知,如果不研究每个SNP的功能,数据库的建立即SNP的发现就没有多大意义。对已发现的SNP的功能的研究,有两个工作是必须的,一是SNP频率分析,一是SNP位点的碱基种类的证实.对于前者,Pyrosequencing是这样进行的:假设研究者手中有若干份来自不同个体的基因组DNA样品,要测这些不同样品的同一SNP的频率,那么研究者可以混合这些样本的基因组DNA,然后做一次PCR,进行一次测序,研究者就可以得到该SNP在这些样本中的频率.如果研究者已经有了各个样本的PCR产物,也可以将PCR产物混合后进行一次PYRO,就可以知道该SNP频率.已有的文献已经做过高达1126样本的PCR产物的混合来确定SNP的频率[2]。这种做法极大地减少了研究者的实验次数和实验消耗。一些其他研究也利用Pyrosequencing技术来确定SNP频率[3,4]。如果是SNP位点的碱基种类的证实,需要首先得到特定SNP所在DNA片段,即PCR产物,然后在SNP位点的上游和/或下游设计测序引物,这样通过对十几个bp序列测定来确定SNP位点的碱基种类及SNP位点上下游十几个碱基的序列.诸如四倍体马铃薯的一些SNP分析[5]和用于法医研究的线粒体DNA SNP分析[6]也是利用Pyrosequencing技术进行的。 细菌鉴定有很多方法,如表型表达(phenotypic expression), 生物化学技术等.如果考虑操作费时和技术复杂,目前很多对细菌鉴定的方法并非最佳化。诸如引起肺结核的分支杆菌,其生长缓慢,经常要培养几周才能得到供生物化学分析,鉴定和株系/亚种分型(subtyping)的纯净培养物。通过传统的培养和生物化学分析方法对其检测和鉴定费时且费用大,影响医生给予患者最合适的治疗。因为如果不能对细菌进行快速精确的鉴定,医生只能给患者开广谱抗生素,因而引发无效治疗和细菌耐药性。 随着分子生物学的发展,对细菌的分子诊断技术正在成熟.DNA所包含的遗传信息决定了不同种生物之间以及同种生物的不同亚种/株系之间的差异。因此分子诊断对细菌的分型比传统方法更为准确。对DNA的分析方法也有很多,如定量PCR,杂交(包括基因芯片)和DNA序列分析等。而只有DNA序列分析是黄金标准.很显然,DNA包含的遗传信息存在于DNA的ATCG排列次序中,搞清ATCG排列次序对DNA分析来说就是终结指标。如对诸如16S rRNA和内源RNAse P (endoribonuclease
P, RNase P)基因的序列分析可以判断很多不同种类细菌或同种细菌的不同亚种/株系。 被称为Ba813的一段DNA序列是B.anthracis的一个特异染色体标记,是B. anthracis区别于与其紧密相关的其他土壤杆菌种的标志。 Ba813长度为277bp,在染色体上为单拷贝[7]. 16S rRNA基因的序列分析被用于细菌分型,但不能用来分析B.anthracis,因为B. anthracis与B.cereus具有一样的16S rRNA序列。 B.anthracis的致病菌株有两个质粒,pXO1含炭疽热毒素产生的基因( lef,cya,pag). pXO2编码包装和孢子形成所必须的产物[7]。目前,通过DNA杂交来检测这些特异致病因子是鉴定B.anthracis的主要手段[7,8]。然而由于缺少一个或两个质粒的非致病菌株可能来自致病菌株[8],因此此方法即不完全可靠又不快速。其他费时的方法包括gamma phage sensitivity tests和carbohydrate profiles[7]。 本研究试图建立新的鉴定B. anthracis及其致病状态的方法,即利用Pyrosequencing技术分析PCR扩增的Ba813的20bp的序列来鉴定B. anthracis,并通过分析lef和位于pXO2的cap的基因序列来确定B. anthracis的致病状态。 提取B. anthracis的质粒和染色体DNA,设计三对引物,分别扩增Ba813中的129 bp, lef基因的177 bp, cap基因的127 bp。每对引物的其中一条用生物素标记。 采用偶连streptavidin的微珠(Streptavidin Sepharose™ HP, Amersham Biosciences AB, Sweden)和PSQ™ 96 Sample Preparation Kit (Pyrosequencing AB) 及其相关方法将PCR双链分离,转移至PSQ 96 SQA Plate的含生物素引物的单链PCR产物和测序引物退火。 利用测序试剂盒SQA Reagent Kits (Pyrosequencing AB)和PSQ 96 DNA分析系统进行序列分析,结果用SQA软件进行分析。 通过对来自Swedish Defence Research Agency的13个B. anthracis分离物的Ba813的20bp片段的序列分析,其中12个分离物被明确鉴定为B. anthracis (Table 1),另外一个由于PCR的失败而被排除.同时也检测了质粒(Table 1). SQA软件精确分析了11个分离物的核苷酸序列(大于等于20bp).其中一个序列的AA被错读为AAA,但这并不影响对细菌的鉴定.菌株鉴定的序列分析的精确度为99.6% (Table 2),而致病力鉴定的序列分析的精确度为100% (Table 2)。 因此,利用PCR和Pyrosequencing技术的序列分析提供了一个可靠的鉴定Bacillus anthracis及其致病力的快速简单的方法。与其他方法相比,此方法速度快,几个小时出结果,而且结果精确。 Pyrosequencing技术在分子诊断方面的应用举例 |